Melatonina revierte el daño oxidativo en glándula submandibular de ratas tratadas con Ciclofosfamida

Autores/as

  • Evelin Bachmeier Facultad de Odontología. UNC https://orcid.org/0000-0001-5900-8603
  • Fernando Martin Wietz Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología. Argentina.
  • Daniela Josefina Porta Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología; Instituto de Investigaciones en Ciencias de la Salud. INICSA-CONICET. Facultad de Ciencias Médicas; Argentina.
  • Lorena Moine Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología; Argentina.
  • Claudio Gastón Dubersarsky Universidad Nacional de Cordoba. Facultad de Odontología. Catedra de Fisiología; Argentina
  • Catalina Melchora Francia Universidad Nacional de Cordoba. Facultad de Odontología. Catedra de Farmacología y Terapéutica “A”; Argentina.
  • Maria Elena Samar Doctora en Medicina. Profesora Plenaria, Universidad Nacional de Cordoba. Facultad de Odontologia. Catedra de Fisiologia; Argentina
  • Maria Angelica Rivoira Doctora en Ciencias de la Salud.  Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología; Instituto de Investigaciones en Ciencias de la Salud. INICSA-CONICET. Facultad de Ciencias Médicas; Argentina.
  • Marcelo Adrian Mazzeo Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología; Argentina.

DOI:

https://doi.org/10.31053/1853.0605.v80.n4.40930

Palabras clave:

melatonina, ciclofosfamida, glándula submandibular, ratas wistar

Resumen

OBJETIVO: Ciclofosfamida (Cf) produce daño oxidativo en glándula submandibular (GSM) de ratas. En el presente trabajo se evaluó el efecto protector antioxidante de melatonina (MLT) en GSM de ratas tratadas con Cf.

METODO: Se utilizaron 40 ratas Wistar machos adultas divididas en 5 grupos (G): G1: control; G2: Control+Etanol: tratados con etanol al 1% durante 10 días consecutivos. Los días 11 y 12 recibieron una dosis de solución salina; G3: Cf: tratados con etanol al 1% durante 12 días, días 11 y 12 recibieron una dosis intraperitoneal (i.p.) de Cf de 50 mg/Kg de pc; G4: Cf + MLT: se administró diariamente MLT (5 mg/Kg pc, intraperitoneal, disuelta en etanol al 1%), días 11 y 12 recibieron Cf igual que G3; G5: MLT: tratamiento 12 días consecutivos con MLT (igual dosis de G4). Los animales fueron anestesiados, extirpándose ambas GSM y sacrificados, previo ayuno 24 hs. Se midió la concentración de ácido úrico (AU), peróxidos lipídicos (PL) y acuosos (PA) y actividad de superóxido dismutasa (SOD) en homogenato de GSM. Análisis estadístico: ANOVA y test de Bonferroni, considerando significativo p<0,05.

RESULTADOS: El tratamiento con Cf disminuyó la concentración de AU y la actividad de SOD (AU, mg/mg prot., G1: 2,50±0,68; G2: 2,18±0,13; G3: 0,54±0,09* G4: 1,95±0,24#, G5: 2,64±0,47, *p< 0,01 G3 vs G1, G2, G4; #p< 0,01 G4 vs G3 y G5; SOD, U/mg prot., G1: 4,57±0.95, G2: 4,79±0,94, G3: 2,18±0,53*, G4: 5,13±1,10, G5: 5,09±0,39, *p< 0,01 G3 vs G1, G2, G4 y G5). El tratamiento con MLT previno esos efectos. Además, Cf aumentó la formación PL y PA.

CONCLUSION: MLT mejoró el estado redox en GSM de ratas tratadas con Cf. MLT podría prevenir los procesos oxidativos en GSM producidos por Cf.

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Biografía del autor/a

Evelin Bachmeier, Facultad de Odontología. UNC

Odontóloga. Doctora en Odontología, Especialista en Docencia Universitaria, Profesora Adjunta y Asistente, Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología y Cátedra de Estomatología “A”; Argentina.

Fernando Martin Wietz , Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología. Argentina.

Odontólogo. Especialista en Docencia Universitaria, Profesor Asistente. Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología. Argentina.

Daniela Josefina Porta, Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología; Instituto de Investigaciones en Ciencias de la Salud. INICSA-CONICET. Facultad de Ciencias Médicas; Argentina.

Licenciada en Nutrición, Adscripta, Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología; Instituto de Investigaciones en Ciencias de la Salud. INICSA-CONICET. Facultad de Ciencias Médicas; Argentina.

Lorena Moine, Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología; Argentina.

Odontóloga Profesora Asistente, Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología; Argentina.

Claudio Gastón Dubersarsky, Universidad Nacional de Cordoba. Facultad de Odontología. Catedra de Fisiología; Argentina

Médico Cirujano. Especialista en Oncología Clínica. Profesor Asistente, Universidad Nacional de Cordoba. Facultad de Odontología. Catedra de Fisiología; Argentina

Catalina Melchora Francia, Universidad Nacional de Cordoba. Facultad de Odontología. Catedra de Farmacología y Terapéutica “A”; Argentina.

Odontóloga. Doctora en Odontología. Profesora Adjunta, Universidad Nacional de Cordoba. Facultad de Odontología. Catedra de Farmacología y Terapéutica “A”; Argentina.

Maria Elena Samar, Doctora en Medicina. Profesora Plenaria, Universidad Nacional de Cordoba. Facultad de Odontologia. Catedra de Fisiologia; Argentina

Medica Cirujana. Doctora en Medicina. Profesora Plenaria, Universidad Nacional de Cordoba. Facultad de Odontologia. Catedra de Fisiologia; Argentina.

Maria Angelica Rivoira, Doctora en Ciencias de la Salud.  Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología; Instituto de Investigaciones en Ciencias de la Salud. INICSA-CONICET. Facultad de Ciencias Médicas; Argentina.

Bioquímica. Doctora en Ciencias de la Salud.  Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología; Instituto de Investigaciones en Ciencias de la Salud. INICSA-CONICET. Facultad de Ciencias Médicas; Argentina.

Marcelo Adrian Mazzeo, Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología; Argentina.

Odontólogo. Doctor en Odontología. Especialista en Docencia Universitaria. Profesor Titular, Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Odontología. Cátedra de Fisiología; Argentina.

Citas

Kim J, Chan JJ. Cyclophosphamide in dermatology. Australas J Dermatol. 2017 Feb;58(1):5-17. doi: 10.1111/ajd.12406.

Ayza MA, Zewdie KA, Tesfaye BA, Wondafrash DZ, Berhe AH. The Role of Antioxidants in Ameliorating Cyclophosphamide-Induced Cardiotoxicity. Oxid Med Cell Longev. 2020 May 10;2020:4965171. doi: 10.1155/2020/4965171.

Ahlmann M, Hempel G. The effect of cyclophosphamide on the immune system: implications for clinical cancer therapy. Cancer Chemother Pharmacol. 2016 Oct;78(4):661-71. doi: 10.1007/s00280-016-3152-1.

Bachmeier E, López MM, Linares JA, Brunotto MN, Mazzeo MA. 5-Fluorouracil and Cyclophosphamide modify functional activity in submandibular gland of rats. J oral res. (Impresa). 2019; 8(5):363-369 doi:10.17126/joralres.2019.056.

Gallia MC, Bachmeier E, Ferrari A, Queralt I, Mazzeo MA, Bongiovanni GA. Pehuén (Araucaria araucana) seed residues are a valuable source of natural antioxidants with nutraceutical, chemoprotective and metal corrosion-inhibiting properties. Bioorg Chem. 2020 Nov;104:104175. doi: 10.1016/j.bioorg.2020.104175.

Bachmeier E, Mazzeo MA, López MM, Linares JA, Jarchum G, Wietz FM, Finkelberg AB. Mucositis and salivary antioxidants in patients undergoing bone marrow transplantation (BMT). Med Oral Patol Oral Cir Bucal. 2014 Sep 1;19(5):e444-50. doi: 10.4317/medoral.19062.

Loy F, Isola M, Isola R, Solinas P, Lilliu MA, Puxeddu R, Ekstrom J. Ultrastructural evidence of a secretory role for melatonin in the human parotid gland. J Physiol Pharmacol. 2015 Dec;66(6):847-53.

Espino J, Pariente JA, Rodríguez AB. Oxidative stress and immunosenescence: therapeutic effects of melatonin. Oxid Med Cell Longev. 2012;2012:670294. doi: 10.1155/2012/670294.

Rivoira M, Rodríguez V, Picotto G, Battaglino R, Tolosa de Talamoni N. Naringin prevents bone loss in a rat model of type 1 Diabetes mellitus. Arch Biochem Biophys. 2018 Jan 1;637:56-63. doi: 10.1016/j.abb.2017.12.001.

Soria EA, Goleniowski ME, Cantero JJ, Bongiovanni GA. Antioxidant activity of different extracts of Argentinian medicinal plants against arsenic-induced toxicity in renal cells. Hum Exp Toxicol. 2008 Apr;27(4):341-6. doi: 10.1177/0960327108092192.

Pandi-Perumal SR, BaHammam AS, Brown GM, Spence DW, Bharti VK, Kaur C, Hardeland R, Cardinali DP. Melatonin antioxidative defense: therapeutical implications for aging and neurodegenerative processes. Neurotox Res. 2013 Apr;23(3):267-300. doi: 10.1007/s12640-012-9337-4.

Sánchez-Rodríguez MA, Mendoza-Núñez VM. Oxidative Stress Indexes for Diagnosis of Health or Disease in Humans. Oxid Med Cell Longev. 2019 Nov 25;2019:4128152. doi: 10.1155/2019/4128152.

Hayes JD, Dinkova-Kostova AT, Tew KD. Oxidative Stress in Cancer. Cancer Cell. 2020 Aug 10;38(2):167-197. doi: 10.1016/j.ccell.2020.06.001.

Bagnall-Moreau C, Chaudhry S, Salas-Ramirez K, Ahles T, Hubbard K. Chemotherapy-Induced Cognitive Impairment Is Associated with Increased Inflammation and Oxidative Damage in the Hippocampus. Mol Neurobiol. 2019 Oct;56(10):7159-7172. doi: 10.1007/s12035-019-1589-z.

Hong BY, Sobue T, Choquette L, Dupuy AK, Thompson A, Burleson JA, Salner AL, Schauer PK, Joshi P, Fox E, Shin DG, Weinstock GM, Strausbaugh LD, Dongari-Bagtzoglou A, Peterson DE, Diaz PI. Chemotherapy-induced oral mucositis is associated with detrimental bacterial dysbiosis. Microbiome. 2019 Apr 25;7(1):66. doi: 10.1186/s40168-019-0679-5.

Bachmeier E, Mazzeo MA, López MM, Linares JA, Jarchum G, Wietz FM, Finkelberg AB. Mucositis and salivary antioxidants in patients undergoing bone marrow transplantation (BMT). Med Oral Patol Oral Cir Bucal. 2014 Sep 1;19(5):e444-50. doi: 10.4317/medoral.19062

Bachmeier E, Migueles Goitea ME, Linares JA, Wietz FM, Jarchum S, Jarchum G, Brunotto MN, Mazzeo MA. Determinación de algunos marcadores de estrés oxidativo, funcionales e inmunológicos en saliva de pacientes sometidos a trasplante de médula ósea (TMO). Rev Fac Cien Med Univ Nac Cordoba. 2021 Dec 28;78(4):384-390. doi: 10.31053/1853.0605.v78.n4.33227.

Mazzeo MA, Barchmeier E, López MM, Linares JA, Brunotto M, Dubersarsky C, Finkelberg AB. Efecto de ciclofosfamida sobre el metabolismo de los hidratos de carbono en glándula submandibular de ratas. Rev Fac Odont. 2018; 28(3) 36-39.

Viñas G, Puig T, Porta R. Estrés oxidativo en pacientes con cáncer: dos caras de una misma moneda. Med Clin (Barc). 2012 Jul 7;139(4):171-5. doi: 10.1016/j.medcli.2011.11.021.

Mazzeo MA, Barchmeier E, López MM, Linares JA, Samar ME, Finkelberg AB, Fonseca I. Cambios histológicos en Glándula Submandibular de ratas tratadas con ciclofosfamida y vitaminas antioxidantes. Estudio preliminar. Rev Fac Odont. 2017; 27(1) 15-18.

Rusanova I, Martínez-Ruiz L, Florido J, Rodríguez-Santana C, Guerra-Librero A, Acuña-Castroviejo D, Escames G. Protective Effects of Melatonin on the Skin: Future Perspectives. Int J Mol Sci. 2019 Oct 8;20(19):4948. doi: 10.3390/ijms20194948

Tordjman S, Chokron S, Delorme R, Charrier A, Bellissant E, Jaafari N, Fougerou C. Melatonin: Pharmacology, Functions and Therapeutic Benefits. Curr Neuropharmacol. 2017 Apr;15(3):434-443. doi: 10.2174/1570159X14666161228122115.

Rosales-Corral S, Tan DX, Reiter RJ, Valdivia-Velázquez M, Martínez-Barboza G, Acosta-Martínez JP, Ortiz GG. Orally administered melatonin reduces oxidative stress and proinflammatory cytokines induced by amyloid-beta peptide in rat brain: a comparative, in vivo study versus vitamin C and E. J Pineal Res. 2003 Sep;35(2):80-4. doi: 10.1034/j.1600-079x.2003.00057.x.

Tan DX, Manchester LC, Esteban-Zubero E, Zhou Z, Reiter RJ. Melatonin as a Potent and Inducible Endogenous Antioxidant: Synthesis and Metabolism. Molecules. 2015 Oct 16;20(10):18886-906. doi: 10.3390/molecules201018886.

Shimozuma M, Tokuyama R, Tatehara S, Umeki H, Ide S, Mishima K, Saito I, Satomura K. Expression and cellular localizaion of melatonin-synthesizing enzymes in rat and human salivary glands. Histochem Cell Biol. 2011 Apr;135(4):389-96. doi: 10.1007/s00418-011-0800-8.

Isola M, Lilliu MA. Melatonin localization in human salivary glands. J Oral Pathol Med. 2016 Aug;45(7):510-5. doi: 10.1111/jop.12409.

Bona S, Rodrigues G, Moreira AJ, Di Naso FC, Dias AS, Da Silveira TR, Marroni CA, Marroni NP. Antifibrogenic effect of melatonin in rats with experimental liver cirrhosis induced by carbon tetrachloride. JGH Open. 2018 May 24;2(4):117-123. doi: 10.1002/jgh3.12055.

Singer C, Tractenberg RE, Kaye J, Schafer K, Gamst A, Grundman M, Thomas R, Thal LJ; Alzheimer's Disease Cooperative Study. A multicenter, placebo-controlled trial of melatonin for sleep disturbance in Alzheimer's disease. Sleep. 2003 Nov 1;26(7):893-901. doi: 10.1093/sleep/26.7.893.

Chitimus DM, Popescu MR, Voiculescu SE, Panaitescu AM, Pavel B, Zagrean L, Zagrean AM. Melatonin's Impact on Antioxidative and Anti-Inflammatory Reprogramming in Homeostasis and Disease. Biomolecules. 2020 Aug 20;10(9):1211. doi: 10.3390/biom10091211.

Loren P, Sánchez R, Arias ME, Felmer R, Risopatrón J, Cheuquemán C. Melatonin Scavenger Properties against Oxidative and Nitrosative Stress: Impact on Gamete Handling and In Vitro Embryo Production in Humans and Other Mammals. Int J Mol Sci. 2017 Jun 14;18(6):1119. doi: 10.3390/ijms18061119.

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Publicado

2023-12-26

Cómo citar

1.
Bachmeier E, Wietz FM, Porta DJ, Moine L, Dubersarsky CG, Francia CM, Samar ME, Rivoira MA, Mazzeo MA. Melatonina revierte el daño oxidativo en glándula submandibular de ratas tratadas con Ciclofosfamida. Rev Fac Cien Med Univ Nac Cordoba [Internet]. 26 de diciembre de 2023 [citado 11 de mayo de 2024];80(4):404-19. Disponible en: https://revistas.unc.edu.ar/index.php/med/article/view/40930