Sensibilidad de biotipos de Conyza sumatrensis a glifosato y a inhibidores de ALS en dos estados de desarrollo
Barra lateral del artículo
Contenido principal del artículo
Resumen
Conyza sumatrensis es una de las malezas más problemáticas de Argentina, con frecuentes fallas de control después de la aplicación de glifosato. El objetivo del trabajo fue evaluar la sensibilidad de biotipos de C. sumatrensis, en dos estados de desarrollo (roseta y vegetativo), a glifosato y a inhibidores de la enzima acetolactato sintasa (ALS). Se realizaron estudios de dosis-respuesta utilizando 0, 1/16, 1/8, 1/4, 1/2, 1, 2, 4, 8 y 16 veces la dosis recomendada para cada herbicida. Al estado de roseta el nivel de resistencia para glifosato fue de 9,8, mientras que en estado vegetativo ninguno de los biotipos fue controlado con la dosis recomendada, siendo menor la sensibilidad del biotipo R (IR = 2,3). El control de ambos biotipos con inhibidores de la ALS fue excelente al estado de roseta, con dosis menores que las recomendadas. Al estado vegetativo los controles fueron adecuados (80 %) con dosis menores que las recomendadas
(0,16 X a 0,97 X), excepto para metsulfuron-metil + clorsulfuron en el biotipo S (1,75 X). Estos resultados confirmarían la existencia de un biotipo resistente a glifosato en Argentina y que los herbicidas inhibidores de la ALS pueden controlar biotipos resistentes e individuos más desarrollados.
Detalles del artículo
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-CompartirIgual 4.0.
Cómo citar
Referencias
Amaro-Blanco, I., Fernández-Moreno, P. T., Osuna-Ruiz, M. D., Bastida, F. y De Prado, R. (2018). Mechanisms of glyphosate resistance and response to alternative herbicide-based management in populations of the three Conyza species introduced in Southern Spain. Pest Management Science, 74 (8), 1925-1937. DOI: https://doi.org/10.1002/ps.4896
Balassone, F., Tuesca, D., Puricelli, E. y Faccini, D. (2019). Detección de una población de rama negra (Conyza sumatrensis (Retz.) E. Walker) con resistencia a herbicidas inhibidores de la síntesis de aminoácidos (ALS). Recuperado de http://www.asacim.org.ar/wp-content/uploads/2019/08/Reporte-de-resistencia-a-ALS-en-Conyza-sumatrensis-Argentina-Balassone-Tuesca.pdf
Braz, G. B. P., Oliveira, R. S., Zobiole, L. H. S., Rubin, R. S., Voglewede, C., Constantin, J. y Takano, H. K. (2017). Sumatran fleabane (Conyza sumatrensis) control in no-tillage soybean with diclosulam plus halauxifen-methyl. Weed Technology, 31 (2), 184-192. DOI: https://doi.org/10.1017/wet.2016.28
Brown, S. M. y Whitwell, T. (1988). Influence of tillage on horseweed, Conyza canadensis. Weed Technology, 2 (3), 269-270. DOI: https://doi.org/10.1017/S0890037X00030566
Diez de Ulzurrun, P., Acedo, M. B., Garavano, M. E., Gianelli, V. e Ispizúa, V. N. (2018). Caracterización morfológica de Conyza blakei, Conyza bonariensis var. bonariensis, Conyza sumatrensis var. sumatrensis y Conyza lorentzii en el sudeste bonaerense (Argentina).
Boletín de la Sociedad Argentina de Botánica, 53 (3), 359-373. DOI: https://doi.org/10.31055/1851.2372.v53.n3.21311
Faccini, D. y Puricelli, E. (2007). Efficacy of herbicide dose and plant growth stage on weeds present in fallow ground. AgriScientia, 24, 29-35. Recuperado de: https://revistas.unc.edu.ar/index.php/agris/article/view/2726
Frene, R. L., Simpson, D. M., Buchanan, M. B., Vega, E.T., Ravotti, M. E. y Valverde, P. P. (2018). Enlist E3TM soybean sensitivity and EnlistTM herbicide-based program control of Sumatran fleabane (Conyza sumatrensis). Weed Technology, 32 (4), 416-423. DOI: https://doi.org/10.1017/wet.2018.29
Gianelli, V., Bedmar, F., Diez de Ulzurrun, P. y Panaggio, H. (2017). Dinámica de emergencia y competencia intraespecífica en Conyza sumatrensis. Agrociencia Uruguay, 21, 69-77. Recuperado de: http://www.scielo.edu.uy/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S2301-15482017000100069&lng=es&nrm=iso
Gianelli, V., Scaramuzza, N., Bedmar, F. y Diez de Ulzurrun, P. (2020). Sensibilidad de Conyza bonariensis y Conyza sumatrensis a glifosato en distintos estadios de desarrollo. Revista de Investigaciones de la Facultad de Ciencias Agrarias - UNR, 0 (31), 25-33. DOI: https://doi.org/10.35305/agro31.238
González-Torralva, F., Gil-Humanes, J., Barro, F., Domínguez-Valenzuela, J. y De Prado, R. (2014). First evidence for a target site mutation in the EPSPS2 gene in glyphosate-resistant Sumatran fleabane from citrus orchards. Agronomy for Sustainable Development, 34, 553-560. DOI: https://doi.org/10.1007/s13593-013-0163-8
González-Torralva, F., Cruz-Hipolito, H., Bastida, F., Mülleder, N., Smeda, R. J. y De Prado, R. (2010).
Differential susceptibility to glyphosate among the Conyza weed species in Spain. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 58 (7), 4361-4366. DOI: https://doi.org/10.1021/jf904227p
Hao, J-H., Qiang, S., Liu, Q. y Cao, F. (2009). Reproductive traits associated with invasiveness in Conyza sumatrensis. Journal of Systematics and Evolution, 47 (3), 245-254. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1759-6831.2009.00019.x
Heap, I. (2020, Abril). The International Survey of Herbicide Resistant Weeds. Recuperado de
http://www.weedscience.org/Summary/Species.aspx?WeedID=65
Kumar, V., Jha, P. y Jhala, A. J. (2017). Confirmation of glyphosate-resistant horseweed (Conyza canadensis) in Montana cereal production and response to POST herbicides. Weed Technology, 31 (6), 799-810. DOI: https://doi.org/10.1017/wet.2017.49
Mylonas, P. N., Giannopolitis, C. N., Efthimiadis, P. G., Menexes, G. C., Madesis, P. B. y Eleftherohorinos, I. G. (2014). Glyphosate resistance of molecularly identified Conyza albida and Conyza bonariensis populations. Crop Protection, 65, 207-215. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cropro.2014.07.012
Nisensohn, L. A., Tuesca, D. y Papa, J. C. (2011). Diferencias en la susceptibilidad al glifosato en
plantas de Conyza bonariensis (L.) Cronquist y Conyza sumatrensis (Retz) con distinto grado de
desarrollo. Para Mejorar la Producción, INTA, 46, 105-108. Recuperado de: https://inta.gob.ar/sites/default/files/script-tmp-diferencias-susceptibilidad-al-glifosato-plantas-cony.pdf
Oliveira Neto, A. M., Constantin, J., Oliveira, Jr R. S., Guerra, N., Dan, H. A., Alonso, D. G., Blainski, E. y Santos, G. (2010). Estratégias de manejo de inverno e verão visando ao controle de Conyza bonariensis e Bidens pilosa. Planta Daninha, 28, 1107-16. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-83582010000500018
Osuna, M. D. y De Prado, R. (2003). Conyza albida: a new biotype with ALS inhibitor resistance. Weed Research, 43 (3), 221-226. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-3180.2003.00337.x
Puricelli, E., Faccini, D., Metzler, M. y Torres, P. (2015). Differential susceptibility of Conyza bonariensis biotypes to glyphosate and ALS-inhibiting herbicides in Argentina. Agricultural Sciences, 6, 22-30. DOI: http://dx.doi.org/10.4236/as.2015.61003
Puricelli, E. y Tuesca, D. (2005). Efecto del sistema de labranza sobre la dinámica de la comunidad de malezas en trigo y en barbechos de secuencias de cultivos resistentes a glifosato. AgriScientia, 22 (2), 69-78.
R-CoreTeam. (2015). R: A Language and Environment for Statistical Computing. (Versión 3.2.2). [Software]. Vienna, Austria: R Foundation for Statistical Computing. Recuperado de https://www.R-project.org
Ritz, C., Baty, F., Streibig, J. C. y Gerhard, D. (2015). Dose-response analysis using R. PLoS ONE, 10 (12), 1-13. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0146021
Sansom, M., Saborido, A. y Dubois, M. (2013). Control of Conyza spp. with glyphosate. A review of the situation in Europe. Plant Protection Science, 49, 44-53. DOI: https://doi.org/10.1722167/2011-PPS
Santos, F. M., Vargas, L., Christoffoleti, P. J., Agostinetto, D., Mariani, F. y Dal Magro, T. (2014a). Differential susceptibility of biotypes of Conyza sumatrensis to chlorimuron-ethyl herbicide. Planta Daninha, 32 (2), 427-435. DOI: http://dx.doi.org/10.1590/S0100-83582014000200021
Santos, F. M., Vargas, L., Christoffoleti, P. J., Agostinetto, D., Martin, T. N., Ruchel, Q. y Fernando, J. A. (2014b). Developmental stage and leaf surface reduce the efficiency of chlorimuron-ethyl and
glyphosate in Conyza sumatrensis. Planta Daninha, 32 (2), 361-375. DOI: http://dx.doi.org/10.1590/S0100-83582014000200014
Santos, G., Oliveira, Jr. R. S., Constantin, J., Constantin Francischini, A., Machado, M. F. P. S., Mangolin, C. A. y Nakajima, J. N. (2014a). Conyza sumatrensis: A new weed species resistant to glyphosate in the Americas. Weed Biology and Management, 14 (2), 106-114. DOI: https://doi.org/10.1111/wbm.12037
Santos, G., Oliveira, Jr. R. S., Constantin, J., Francischini, A. C. y Osipe, J. B. (2014b). Multiple resistance of Conyza sumatrensis to chlorimuronethyl and to glyphosate. Planta Danhina, 32 (2), 409-416. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-83582014000200019
Seefeldt, S. S., Jensen, J. E. y Fuerst, E. P. (1995). Log logistic analysis of herbicide dose response
relationships. Weed Technology, 9 (2), 218-227. Shrestha, A., Hembree, K. y Va, N. (2007). Growth stage influences level of resistance in glyphosate-resistant horseweed. California Agriculture, 61 (2), 67-70. DOI: https://doi.org/10.3733/ca.v061n02p67
Takano, H. K., Oliveira, Jr. R. S., Constantin, J., Braz, G. B. P. y Gheno, E. A. (2017). Goosegrass resistant to glyphosate in Brazil. Planta Daninha, 35, 1-9. DOI: https://doi.org/10.1590 /s0100-83582017350100013
Thebaud, C. y Abbott, R. J. (1995). Characterization of invasive Conyza species (Asteraceae) in Europe: Quantitative trait and isozyme analysis. American Journal of Botany, 82 (3), 360-368.
Travlos, I. S. y Chachalis, D. (2013). Assessment of glyphosate-resistant horseweed (Conyza canadensis L. Cronq.) and fleabane (Conyza albida Willd. ex Spreng) populations from perennial crops in Greece. International Journal of Plant Production, 7 (4), 665-676.
Trezzi, M. M., Balbinot, Jr. A. A., Benin, G., Debastiani, F., Patel, F. y Miotto, Jr. E. (2013). Competitive ability of soybean cultivars with horseweed (Conyza bonariensis). Planta Daninha, 31 (3), 543-550. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-83582013000300006
Vencill, W. K. y Banks, P. A. (1994). Effects of tillage systems and weed management on weed populations in grain sorghum (Sorghum bicolor). Weed Science, 42 (4), 541-547. DOI: https://doi.org/10.1017/S0043174500076918