Sistema de inmersión temporal (SIT): alta eficiencia en la propagación in vitro del portainjerto híbrido prunuspersica x p. Amygdalus
Palabras clave:
IN VITRO, PORTAINJERTO HÍBRIDO, PRUNUSPERSICA X P. AMYGDALUS, SISTEMA DE INMERSIÓN TEMPORALResumen
El objetivo del trabajo es desarrollar un protocolo para la propagación masiva y enraizamiento in vitro y aclimatación ex
vitro de plantines híbridos de Prunus persica x P. amygdalus utilizando un Sistema de Inmersión Temporal (SIT) con la
finalidad de multiplicar y conservar estos clones localmente. Se evaluaron diferentes condiciones de cultivo en SIT para 3
ciclos de multiplicación y uno de enraizamiento in vitro y su efecto en la aclimatación ex vitro. Se plantearon ensayos
teniendo en cuenta 3 frecuencias de inmersión (cada 3, 6 y 12 hs), el tipo de explanto utilizado (apical y basal) y se lo
comparo con un sistema de cultivo in vitro tradicional en medio semisólido. Se evaluó para cada uno de los tratamientos
parámetros físicos, bioquímicos y morfológicos durante el crecimiento. Los brotes apicales y la frecuencia de inmersión
cada 6 hs, resultó la combinación más conveniente para la propagación in vitro de este híbrido. Fue superior en
crecimiento, acumulación de materia seca en hojas y tallos, numero de nudos generados, tasa de multiplicación y
porcentaje de enraizamiento. Por otra parte, el tratamiento con frecuencia de inmersión de 12 hs, obtuvo una mejor
performance en contenidos de clorofila total, clorofila a y b y carotenoides. Sin embargo, estos resultados no marcaron
significancia en el porcentaje de sobrevivencia en la etapa de aclimatación. En esta etapa, las plantas provenientes del
tratamiento de 6 hs de inmersión mostraron alta sobrevivencia durante la aclimatación ex vitro (60 %) versus un (50%) de
supervivencia de las plantas provenientes del tratamiento de frecuencia de inmersión cada 12 hs.
Referencias
Abbasi, F., Khadivi, A., Taghizadeh, M., & ValizadehKaji, B.
(2019). Micropropagation of Prunus scoparia, a
Suitable Rootstock for Almond under Drought
Conditions. International Journal of Fruit Science,
19(2), 221-230.
Adelberg J. 2005. Efficiency in thin-film liquid system for
Hosta micropropagation. Plant cell, tissue and organ
culture, 81(3), 359-368.
Chen C. and Chen J. J. 2002. Measurement of gas
exchange rates in plant tissue culture vessels. Plant
cell, tissue and organ culture, 71(2): 103-109.
Dahot M. U. 2012. Comparative characteristics of
micropropagated plantlets of banana from bbtvinfected
explants to its normal and saline stressed
cultures. Pakistan Journal of Botany, 44(3): 1127-
1130.
Damiano C., La Starza S. R., Monticelli S., Gentile A.,
Caboni E., and Frattarelli A. 2005. Propagation of
Prunus and Malus by temporary immersion. In Liquid
Culture Systems for in vitro Plant Propagation. Ed.
Springer Netherlands, pp. 243-251.
Di Rienzo J.A., Casanoves F., Balzarini M.G., Gonzalez L.,
Tablada M., Robledo C.W. InfoStat versión 2020.
Centro de Transferencia InfoStat, FCA, Universidad
Nacional de Córdoba, Argentina. URL
Farahani F., and Majd A. 2012. Comparison of liquid
culture methods and effect of temporary immersion
bioreactor on growth and multiplication of banana
(Musa, cv. Dwarf Cavendish). African Journal of
Biotechnology, 11(33), 8302-8308.
Georgiev V., Schumann A., Pavlov A., & Bley T. 2014.
Temporary immersion systems in plant biotechnology.
Engineering in Life Sciences, 14(6), 607-621.
INASE. 2005. Instituto Nacional de Semillas. Resolución
834/2005.
Kose S. 2015. In Vitro Propagation of ‘Garnem’ (P. persica
x P. dulcis) Rootstock. Journal of Plant Molecular
Biology and Biotechnology, 5(1), 25-30
Rivata, R., Bima, P., Gilesky, N., Gual, L. 2010. Avances en
la obtención de un protocolo para el cultivo in vitro del
híbrido Garfinem (almendro x durazno). Análisis de
Semillas, Tomo IV, Volumen IV, N° 16, Año 2010.
Rocano, M. N., Villena, P. G., and Peña, D. F. (2017).
Evaluación de los sistemas de cultivo semisólido y BIT
en la multiplicación in vitro de Juglans neotrópica.
Maskana, 8(1), 103-109.
Sadeghi F., Yadollahi A., Kermani M. J., & Eftekhari M.
2015. Optimizing culture media for in vitro
proliferation and rooting of Tetra (Prunus empyrean)
rootstock. Journal of Genetic Engineering and
Biotechnology, 13(1), 19-23.
SENASA. 2012.Servicio Nacional de Sanidad y Calidad
Agroalimentaria. Resolución 203/2012.
SENASA. 2013. Servicio Nacional de Sanidad y Calidad
Agroalimentaria. Disp. DNPV Nº 4/2013
Torrents Pallarès S. 2013. Els bioreactors d’immersió
temporal com a millora de les tècniques clàssiques de
micropropagación del peuhibrid GF-677
(Prunusamygdalus x Prunuspersica) i del nabiu
(Vaccinium corymbosum L.) cv. Biloxi. Tesis doctoral.
Universitat politécnica de catalunya. Barcelona.
España. pp. 98
Weibel A. 2011. Duraznero: Portainjertos tolerantes al
replante. FRDEPI. Federación Plan Estratégico Durazno
para Industria. INTA EEA Junín. Mendoza. URL
http://www.fepedi.com.ar/?p=160. Activo mayo
2020.
Descargas
Publicado
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2020 Delfino, P., Rivata, R., Bima, P.
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.
Atribución – No Comercial – Compartir Igual (by-nc-sa): No se permite un uso comercial de la obra original ni de las posibles obras derivadas, la distribución de las cuales se debe hacer con una licencia igual a la que regula la obra original.