Efecto de la diabetes en células madres de la cavidad bucal. Una revisión breve

Autores

  • Gloria Cifuentes-Suazo et al.

Palavras-chave:

células madres, diabetes, cavidad oral, regeneracion

Resumo

Resumen

 

La ingeniería tisular es uno de los pilares de técnicas de regeneración en medicina, teniendo su base en el uso de células madres mesenquimales (CMM). Las CMM tienen capacidades de auto renovación y diferenciación en múltiples linajes, esto debido a que son células madres multipotentes. Las CMM se pueden aislar de varios tejidos, una buena fuente de CMM es la cavidad oral, incluyendo partes como el hueso alveolar, ligamento periodontal, pulpa dental, folículo dentario, mucosa oral y encía. A pesar de ser un gran avance en las ciencias médicas, la utilización de las CMM puede verse limitada por varios factores que afecten las capacidades biológicas de estas células. Considerando la cavidad oral como una de las principales fuentes de obtención de gran cantidad de CMM, uno de los factores que tiene grandes repercusiones en la salud oral es la diabetes, el ejemplo más claro es la relación bidireccional que tiene con la periodontitis. Hoy en día la periodontitis se considera la sexta complicación de la diabetes. Dado lo anterior, se hace necesario identificar los efectos que también podría tener sobre las CMM obtenidas en cavidad bucal, efectos que podrían dificultar su uso en ingeniería tisular. El objetivo de esta revisión es describir el efecto de la diabetes en CMM de la cavidad bucal.

 

Palabras clave: células madre, diabetes, cavidad bucal, regeneración.

Referências

1. Wang M, Yuan Q, Xie L. Mesenchymal Stem Cell-Based Immunomodulation: Properties and Clinical Application. Stem Cells Int. 2018; 2018:3057624.

2. Madrigal M, Rao KS, Riordan, NH. A review of therapeutic effects of mesenchymal stem cell secretions and induction of secretory modification by different culture methods. J Transl Med. 2014; 12(1):1-14.

3. Kamel AHM, Kamal SM, Abubakr N. Effect of smoking on the proliferation capacity and osteogenic potential of human dental pulp stem cells (DPSCs). Dent Med Probl. 2020; 57(1):1-6.

4. De Becker A, Riet IV. Homing and migration of mesenchymal stromal cells: How to improve the efficacy of cell therapy? World J Stem Cells 2016; 8(3):73–87.

5. Liu J, Yu F, Sun Y, Jiang B, Zhang W, Yang J, et al. Characteristics and Potential Applications of Human Dental Tissue-Derived Mesenchymal Stem Cells. Stem Cells 2015; 33(3):627–638.

6. Gronthos S, Mankani M, Brahim J, Robey PG, Shi S. Postnatal human dental pulp stem cells (DPSCs) in vitro and in vivo. Proc Natl Acad Sci. 2000; 97: 13625–13630.

7. Seo BM, Miura M, Gronthos S, Bartold PM, Batouli S, et al. Investigation of multipotent postnatal stem cells from human periodontal ligament. Lancet 2004; 364(9429):149-55.

8. Takahashi M, Yamada Y, Ozawa R, Ohya M, Ito K, et al. Expression of Odontoblastic-related Genes in Human Dental Follicle Cells, Dental Pulp Stem Cells, and Oral Mucosal Cells. Int J Oral-Med Sci. 2004; 3(1):41–48.

9. Trubiani O, Zalzal SF, Paganelli R, Marchisio M, Giancola R, et al. Expression profile of the embryonic markers nanog, OCT-4, SSEA-1, SSEA-4, and frizzled-9 receptor in human periodontal ligament mesenchymal stem cells. J Cell Physiol. 2010; 225(1):123-31.

10. Sonoyama W, Liu Y, Yamaza T, Tuan RS, Wang S, et al. Characterization of the apical papilla and its residing stem cells from human immature permanent teeth: A pilot study. J Endod. 2008; 34(2):166–171.

11. Morsczeck C, Götz W, Schierholz J, Zeilhofer F, Kühn U, et al. Isolation of precursor cells (PCs) from human dental follicle of wisdom teeth. Matrix Biol 2005; 24(2):155-65.

12. Marynka-Kalmani K, Treves S, Yafee M, Rachima H, Gafni Y, et al. The lamina propria of adult human oral mucosa harbors a novel stem cell population. Stem Cells 2010; 28(5):984-95.

13. Diomede F, Rajan TS, Gatta V, D’Aurora M, Merciaro I, et al. Stemness Maintenance Properties in Human Oral Stem Cells after Long-Term Passage. Stem Cells Int.2017; 2017:5651287.

14. WHO. Informe mundial sobre la diabetes: Resumen de orientación. Disponible en: https://www.who.int/diabetes/global-report/es/

15. Albert DA, Ward A, Allweiss P, Graves DT, Knowler WC, Kunzel C, et al. Diabetes y enfermedades bucodentales: implicaciones para los profesionales de la salud. Ann. NY Acad Sci. 2012; 1255: 1-15.

16. Mauri-Obradors E, Estrugo-Devesa A, Jane-Salas E, Vinas M, Lopez-Lopez J. Oral manifestations of Diabetes Mellitus. A systematic review. Med Oral Patol Oral Cir Bucal 2017; 22 (5):e586-94.

17. Loe H. Periodontal disease; the sixth complication of diabetes mellitus. Diabetes Care 1993; 16(1):329‐ 334.

18. Kocher T, König J, Borgnakke WS, Pink C, Meisel P. Periodontal complications of hyperglycemia/diabetes mellitus: Epidemiologic complexity and clinical challenge. Periodontol. 2000 2018; 78(1):59–97.

19. Guo ZL, Gan SL, Cao CY, Fu R, Cao SP, et al. Advanced glycosylated end products restrain the osteogenic differentiation of the periodontal ligament stem cell. J Dent Sci. 2019; 14(2): 146–151.

20. Liu Q, Hu CH, Zhou CH, Cui XX, Yang K, et al. DKK1 rescues osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells isolated from periodontal ligaments of patients with diabetes mellitus induced periodontitis. Sci Rep. 2015; 5(1):1-11.

21. Kato H, Taguchi Y, Tominaga K, Kimura D, Yamawaki I, et al. High Glucose Concentrations Suppress the Proliferation of Human Periodontal Ligament Stem Cells and Their Differentiation Into Osteoblasts. J Periodontol. 2016; 87(4):e44–e51.

22. Zhang S, Song S, Wang S, Duan Y, Zhu W. Type 2 diabetes affects postextraction socket healing and influences first‐stage implant surgery: A study based on clinical and animal evidence. Clin Implant Dent Relat Res.2019; 21(3):436-445.

23. Luo H, Zhu W, Mo W, Liang M. High-glucose concentration aggravates TNF-alpha-induced cell viability reduction in human CD146-positive periodontal ligament cells via TNFR-1 gene demethylation. Cell Biol Int. 2020 Dec;44(12):2383-2394.

24. Guo Z, Chen R, Zhang F, Ding M, Wang P. Exendin-4 relieves the inhibitory effects of high glucose on the proliferation and osteoblastic differentiation of periodontal ligament stem cells. Arch Oral Biol. 2018; 91:9–16.

25. Zhang K, Liu F, Jin D, Guo T, Hou R, et al. Autophagy preserves the osteogenic ability of periodontal ligament stem cells under high glucose conditions in rats. Arch Oral Biol. 2019; 101:172–179.

26. Kichenbrand C, Grossin L, Menu P, Moby V. Behaviour of human dental pulp stem cell in high glucose condition: impact on proliferation and osteogenic differentiation. Arch Oral Biol. 2020;118:104859.

Downloads

Publicado

2022-08-01

Edição

v. 32 n. 2 (2022): Rev Fac Odont 32(2)-2022-Agosto

Seção

INVESTIGACIÓN

Licença

Creative Commons License

Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.

Aquellos autores/as que tengan publicaciones con esta revista, aceptan los términos siguientes:

  1. Los autores/as conservarán sus derechos de autor y garantizarán a la revista el derecho de primera publicación de su obra, el cuál estará simultáneamente sujeto a la Licencia de reconocimiento de Creative Commons que permite a terceros:
    • La licenciante no puede revocar estas libertades en tanto usted siga los términos de la licencia
  2. Los autores/as podrán adoptar otros acuerdos de licencia no exclusiva de distribución de la versión de la obra publicada (p. ej.: depositarla en un archivo telemático institucional o publicarla en un volumen monográfico) siempre que se indique la publicación inicial en esta revista.
  3. Se permite y recomienda a los autores/as difundir su obra a través de Internet (p. ej.: en archivos telemáticos institucionales o en su página web) después del su publicación en la revista, lo cual puede producir intercambios interesantes y aumentar las citas de la obra publicada. (Véase El efecto del acceso abierto).