EMERGENCIA DE PLÁNTULAS DE HEDEOMA MULTIFLORA BENTH INOCULADAS CON RIZOBACTERIAS PROMOTORAS DEL CRECIMIENTO DE LAS PLANTAS (PGPR)

Autores/as

  • Florencia Turco Facultad de Ciencias Agropecuarias
  • E. Banchio INBIAS Instituto Biotecnología Ambiental y Salud (CONICET-Universidad Nacional de Río Cuarto).
  • A. G. Chaves Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Cátedra de Genética. Córdoba. Argentina
  • L. E. Torres Universidad Nacional de Córdoba. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Cátedra de Genética. Córdoba. Argentina

Palabras clave:

pseudomonas putida SJ04, Bacillus amyloliquefaciens GB03, Hedeoma multiflora, PGPR, especies nativas

Resumen

Hedeoma multiflora Benth. es una hierba serrana aromática y medicinal nativa de la provincia de Córdoba. Dado que la demanda se cubre a través de la recolección de ejemplares silvestres, diezmando las poblaciones naturales, es necesario diseñar estrategias para lograr la preservación y utilización sostenible del recurso. Esto implica el conocimiento de las características de germinación y crecimiento de la especie. Las PGPR (rizobacterias promotoras del crecimiento de las plantas) son bacterias benéficas de vida libre del suelo que juegan un rol significativo en promover el crecimiento y desarrollo vegetal, al colonizar el sistema radicular de la planta. Se planteó como objetivo de trabajo evaluar el número de plántulas emergidas de H. multiflora, a partir de la inoculación de semillas con rizobacterias (PGPRs). El ensayo se llevó a cabo en el invernadero de la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad Nacional de Córdoba. Se utilizaron 25 semillas recolectadas (abril, 2019) de las localidades Río Cuarto (Dpto. Río Cuarto) y Bialet Massé (Dpto. Punilla), de la provincia de Córdoba, previamente desinfectadas. Las cepas que se utilizaron para la inoculación fueron Pseudomonas putida SJ04 y Bacillus amyloliquefaciens GB03. Los tratamientos fueron: P. putida (SJ04), B. amyloliquefaciens (GB03), Medio de cultivo y Control, realizando 3 repeticiones. Los resultados se efectuaron mediante el análisis de varianza (ANOVA) y como test a posteriori se aplicó el test de Fisher LSD, a nivel de probabilidad de p ≤0,05. De acuerdo a los resultados obtenidos se concluye que B. amyloliquefaciens (GB03) y P. putida (SJ04) presentaron mejor comportamiento en la germinación y emergencia de las plántulas de H. multiflora. Así mismo la presencia de mucílago en las semillas de H. multiflora, podría ser un factor que interfiera en el tiempo de imbibición de las cepas analizadas. Es necesario repetir el ensayo, utilizando mayor número de semillas y provenientes de cosechas tardías.

Citas

Alstrom, S. & R. G. Burns. 1989. Cyanide production by rhizobacteria as a posible mechanism of plant growth inhibition. Biol. Fert. Soils 7: 232 – 238. Asociación Tecnología y Desarrollo (TECNIDES). 1994. Estudio sobre cultivos in vitro de “tara” (Caesalpinia spinosa). Documento emitido por la FAO. Lima, Perú. 47pp.

Backer, R, Rokem, JS, Ilangumaran, G, Lamont, et al. 2018. Plant growth-promoting rhizobacteria: context, mechanisms of action, and roadmap to commercialization of biostimulants for sustainable agriculture. Front. Plant Sci. 9:1473. 10.3389/fpls.2018.01473.

Banchio, E, Bogino P, Zygadlo, J, Giordano, W. 2008. Plant growth promoting rhizobacteria improve growth and essential oil yield in Origanum majorana L. Bioch. Syst. Ecol. 36:766-771

Banchio, E, Xie, X, Zhang, H, Paré, PW. 2009. Soil Bacteria Elevate Essential Oil Accumulation and Emissions in Sweet Basil. J. Agric. Food Chem. 57: 653-657.

Banchio, E, Bogino, P, Santoro, M, Torres, L, Zygadlo, J, Giordano, W. 2010. Systemic induction of monoterpene biosynthesis in Origanum x majoricum by soil bacteria. J. Agric. Food Chem. 58: 650-654.

Barboza G.E., Cantero J.J., Nuñez C.O. y Ariza Espinar L. 2006. Flora Medicinal de la Provincia de Córdoba (Argentina) Pteridofitas y Antófitas silvestres o naturalizadas. Ed. Museo Botánico, Argentina, pp. 1251.

Barboza G.E., Bonzani N., Filippa E.M., Luján M.C., Moreno R., Bugatti M., Decolatti N. y Ariza Espinar L. 2001. Atlas histo-morfológico de plantas de interés medicinal de uso corriente en Argentina. Museo botánico de Córdoba, Córdoba-Argentina, pp. 1126-1128.

Brunetti P.C. 2008. Propagación in vitro de Hedeoma multiflorum Benth. y composición de aceites esenciales. Tesis de Grado. Facultad de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales. Universidad Nacional de Córdoba, Córdoba, Argentina.

Cappellari, L, Santoro, MV, Nievas, F, Giordano, W, Banchio, E. 2013. Increase of secondary metabolite content in marigold by inoculation with plant growth-promoting rhizobacteria. Appl. Soil Ecol. 70:16-22.

Carrillo, G., J. Juárez, D. Ruiz & R. Müller. 2000. Aumento del rendimiento de tomate (Lycopersicon esculentum Mill) cuando la raíz se desarrolla colonizada por microorganismos. Biotec. Aplic. 17: 171 – 176.

Choi, SK, Jeong, H, Kloepper, JW, Ryu, CM. 2014. Genome sequence of Bacillus amyloliquefaciens GB03, an active ingredient of the first commercial biological control product. Genome Announc. e01092-14.

Dakora, F. & D. Phillips. 2002. Root exudates as mediators of mineral acquisition in low -nutrient environments. Plant and Soil 245: 35 – 47.

Darrant Barreto, Nelson Valero, Adriana Muñoz & Arnaldo Peralta. (2007). Efecto de microorganismos rizosféricos sobre germinación y crecimiento temprano de Anacardium excelsum. Rev. Zona Áridas 11(1): 240 – 250.

Di Rienzo J.A., Casanoves F., Balzarini M.G., Gonzalez L., Tablada M., Robledo C.W. InfoStat versión 2020. Grupo InfoStat, FCA, Universidad Nacional de Córdoba, Argentina. URL http://www.infostat.com.ar

Elechosa M.A., Aguirre E., Bandoni A.L., Di Leo Lira P.M.R., Fernández E.A., Heit C., Juárez M.A., López S., Martínez A.J, Martínez E., Marino A.M., Molina A.C., Molina A.M., Van Baren C.M., Viturro C.I. 2009, Manual de recolección sustentable de plantas aromáticas nativas de la región central y noroeste de la Argentina, Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria, 7-15 pp.

Kloepper, J.W.E., 1993. Plant-growth-promoting rhizobacteria as iological control agents”. In: Metting, F.B. (Ed.), Soil Microbial Ecology: Applications in Agricultural and Environmental Management. Marcel Dekker Inc., New York, pp. 255–273.

Liébana C. 2011. Caracterización citogenética de poblaciones de (Hedeoma multiflora Benth.) tomillito de las sierras. Tesis de Grado. Facultad de Ciencias Exactas Físicas y Naturales, Universidad Nacional de Córdoba, Córdoba, Argentina.

Loper J. & M. Scroth. 1986. Influence of bacterial source of indole – 3 – aceti acid on root elongation of sugar beet. Physiol. Biochem. 76: 386 – 389.

Lucy, M, Reed, E., Glick, BR. 2004. Applications of free living plant growth-promoting rhizobacteria. Anton Leeuw 86:1-25.

Luria, S. E. y Burrous, J. W. (1955). Hybridization between Escherichia coli and Shigella. J. Bacteriol. 74: 461-47.

Martínez G., Planchuelo A., Fuentes E. y Ojeda M.S. 2006. A numeric index to establish conservation priorities for medicinal plants in the Paravachasca Valley. Córdoba. Argentina. Biodiversity and Conservation, 15: 2457-2475.

Ogata, K; Arellano, C., Zuñiga, D. 2008. Efecto de diferentes bacterias aisladas de rizósfera de Caesalpina spinosa en la germinación de diferentes especies vegetales cultivados. Rev. Zonas Áridas 12 (1).

Pineda, A., Zheng S.-J., van Loon, JJA, Pieterse CMJ, Dicke, M. 2010. Helping plants to deal with insects: the role of beneficial soil-borne microbes. Trends in Plant Science, 15, 507–514.

Rashid, MHO, Chung, YR. 2017. Induction of systemic resistance against insect herbivores in plants by beneficial soil microbes. Front. Plant Sci.8:1816.

Salomon, MV, Funes Pinter I, Piccoli, P, Bottini, R. 2017. Use of Plant Growth-Promoting Rhizobacteria as Biocontrol Agents: Induced Systemic Resistance Against Biotic Stress in Plants. In: Kalia V. (eds) Microbial Applications Vol.2. Springer, Cham.

Santoro, VM, Bogino, PC, Nocelli, N, Cappellari, L, Giordano, W., Banchio, E. 2016. Analysis of plant growth-promoting effects of fluorescent Pseudomonas trains isolated from Mentha piperita rhizosphere and effects of their volatile organic compounds on essential oil composition. Front. Microb. 7: 1085.

Shikano, I, Rosa, C, Tan, CW, Felton, GW. 2017.Tritrophic Interactions: microbe-mediated plant effects on insect herbivores. Annu. Rev. Phytopathol. 55:13.1-13.19

Shrivastava, S, Egamberdieva, D, Varma, A. 2015. Plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR) and medicinal plants: the state of the art. En: Egamberdieva, D., Shrivastava, S. y Varma, A. (Eds.) Plant Growth-Promoting Rhizobacteria (PGPR) and Medicinal Plants. (pp.1-16). New York, Estados Unidos: Soil Biology Series. Springer Books

Tonelli, M, Fabra, A. 2014. The biocontrol agent Bacillus sp. CHEP5 primes the defense response against Cercospora sojina. World J. Microbiol. Biotechnol. 30:2503-09

Van Loon, LC. 2007. Plant response to plant growth-promoting rhizobacteria. E. J. Plant Pathol. 119: 243-254.

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Publicado

2021-12-22

Número

Sección

INFORMES DE RESULTADOS/AVANCES