Análisis de la biodisponibilidad tisular de polifenoles totales mediante las técnicas de Folin Ciocalteu y Fast Blue BB en órganos de ratones Balb/c

Agustin Ramiro Miranda, Claudia Albrecht, Elio Andrés Soria

Resumen


El potencial biosanitario de los polifenoles radica en su capacidad para modular el balance redox y los mecanismos implicados en el desarrollo de enfermedades crónicas no transmisibles.
Objetivo: El objetivo de este estudio fue determinar la concentración de polifenoles totales en diferentes órganos murinos mediante el ensayo de las técnicas analíticas de Folin Ciocalteu (FC) y Fast Blue BB (FBBB).
Método: ratones Balb/c hembras (n?3) recibieron durante 15 días 100 mg/Kg/d de extracto de Lantana grisebachii (LG), Aspidosperma quebracho-blanco (AQB) o Ilex paraguariensis (IP) y el grupo control (tratados con agua sin extracto). Las concentraciones de polifenoles se midieron en telencéfalo, diencéfalo, mesencéfalo, tallo encefálico, cerebelo, bazo, timo y tejido cardiopulmonar. Los resultados fueron comparados por ANOVA seguido de la prueba de Tukey (p<0,05).
Resultados: El método FBBB proporcionó estimaciones más altas que FC (4,5 veces en telencéfalo, 8,4 en mesencéfalo, 5 en tallo encefálico, 7,2 en bazo, 68,5 en timo y 4 en tejido cardiopulmonar). Con respecto a los tratamientos, se halló con FBBB que el grupo tratado con AQB tenía un aumento del nivel de polifenoles en tallo encefálico (p<0,02). Con FBBB se detectó una disminución del contenido tímico de polifenoles tras el tratamiento con IP (p<0,005). Los cerebelos de los animales que recibieron IP y los telencéfalos de C mostraron diferencias significativas al ser analizados con FC (p<0,05, p<0,0035 respectivamente).
Conclusiones: El método FBBB dio como resultado estimaciones más elevadas que FC, lo que podría estar relacionado con mayor especificidad de la técnica para reaccionar con compuestos fenólicos.


Palabras clave


Polifenoles; Folin Ciocalteu; Fast Blue BB; Fitoquímicos; Biodisponibilidad

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Referencias


Garaguso I, Nardini M. Polyphenols content, phenolics profile and antioxidant activity of organic red wines produced without sulfur dioxide/sulfites addition in comparison to conventional red wines. Food Chem 2015;179: 336-42. DOI: 10.1016/j.foodchem.2015.01.144

Chiva-Blanch G, Urpi-Sarda M, Llorach R, et al. Differential effects of polyphenols and alcohol of red wine on the expression of adhesion molecules and inflammatory cytokines related to atherosclerosis: a randomized clinical trial. Am J Clin Nutr 2012;95(2): 326-34. DOI: 10.3945/ajcn.111.022889

Spencer JP, El Mohsen MMA, Minihane AM, Mathers JC. Biomarkers of the intake of dietary polyphenols: strengths, limitations and application in nutrition research. Br J Nutr 2008;99(1): 12-22. DOI: 10.1017/S0007114507798938

El Gharras H. Polyphenols: food sources, properties and applications–a review. Int J Food Sci Tech 2009;44(12): 2512-18. DOI: 10.1111/j.1365-2621.2009.02077.x

Avella DMG, García CAO, Cisneros AM. Medición de fenoles y actividad antioxidante en malezas usadas para alimentación animal. In Memorias del Simposio de Metrología 2008. Universidad Autónoma de Querétaro, México.

Spizzirri UG, Restuccia D, Cirillo G, Puoci F, Parisi OI, Picci N. Antioxidative Effectiveness of Environment Friendly Functional Biopolymers for Food Applications. En Pathways to Environmental Sustainability (pp. 65-74), 2014. Springer International Publishing.

Agbor GA, Vinson JA, Donnelly PE. Folin-Ciocalteu reagent for polyphenolic assay. Int J Food Sci Nutr Diet 2014;3(8): 147-56. DOI: dx.doi.org/10.19070/2326-3350-1400028

Blainski A, Lopes GC, De Mello JCP. Application and analysis of the Folin Ciocalteu method for the determination of the total phenolic content from Limonium Brasiliense L. Molecules 2013;18(6): 6852-65. DOI: 10.3390/molecules18066852

Prior RL, Wu X, Schaich K. Standardized methods for the determination of antioxidant capacity and phenolics in foods and dietary supplements. J Agric Food Chem 2005;53(10): 4290-302. DOI: 10.1021/jf0502698

Berker KI, Ozdemir Olgun FA, Ozyurt D, Demirata B, Apak R. Modified Folin–Ciocalteu antioxidant capacity assay for measuring lipophilic antioxidants. J Agric Food Chem 2013;61(20): 4783-91. DOI: 10.1021/jf400249k

Medina MB. Determination of the total phenolics in juices and superfruits by a novel chemical method. J Funct Foods 2011;3(2): 79-87.

Medina MB. Simple and rapid method for the analysis of phenolic compounds in beverages and grains. J Agric Food Chem 2011;59(5): 1565-71. DOI: 10.1021/jf103711

Cittadini MC, Canalis AM, Albrecht C, Soria EA. Effects of oral phytoextract intake on phenolic concentration and redox homeostasis in murine encephalic regions. Nutr Neurosci 2014;18(7): 316-22. DOI: 10.1179/1476830514Y.0000000130

Canalis AM, Cittadini MC, Albrecht C, Soria EA. In vivo redox effects of Aspidosperma quebracho-blanco Schltdl., Lantana grisebachii Stuck and Ilex paraguariensis A. St.-Hil. on blood, thymus and spleen of mice, Indian J Exp Biol. 2014;52(9): 882-9.

Lim FPK, Bongosia LFG, Yao NBN, Santiago LA. Cytotoxic activity of the phenolic extract of virgin coconut oil on human hepatocarcinoma cells (HepG2). IFRJ 2014; 21(2).

Lester GE, Lewers KS, Medina MB, Saftner RA. Comparative analysis of strawberry total phenolics via Fast Blue BB vs. Folin–Ciocalteu: Assay interference by ascorbic acid. J Food Compost Anal 2012;27(1): 102-7. DOI:10.1016/j.jfca.2012.05.003


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