anatomía comParada y análiSiS morfométrico en  
eSPecieS de PolyStichum (dryoPteridaceae) del Sur de  
Sudamérica  
comParative anatomy and morPhometric analySeS of PolyStichum  
(dryoPteridaceae) from Southern South america  
1,2  
y Gloria E. Barboza  
Rita E. Morero * , Melisa A. Giorgis  
Summary  
Background and aims: Polystichum is represented in Argentina and Chile by  
1 species, which originated within the Austral South American and the Andean  
lineages. The taxonomy of Polystichum is controversial because of its widespread  
hybridization and complex patterns of reticulation. The aims of the present study  
are: 1) to define morpho-anatomical characters that contribute to the differentiation  
of both lineages, 2) to improve the species delimitation.  
1
. Instituto Multidisciplinario de  
1
Biología Vegetal, CONICET- UNC,  
Universidad Nacional de Córdoba,  
Córdoba, Argentina.  
2
. Facultad de Ciencias Químicas,  
Universidad Nacional de Córdoba,  
Córdoba, Argentina.  
M&M: Morphological measurements and histological examinations under light  
microscope, were made of fronds and rhizomes of nine Polystichum species  
3
. Facultad de Ciencias Exactas,  
(seven belong to the Austral South American Clade and two to the Andean Clade).  
Físicas y Naturales, Universidad  
Nacional de Córdoba, Córdoba,  
Argentina.  
Furthermore, 13 quantitative characters of 77 Austral South American herbarium  
specimens were included in two multivariate statistical procedures.  
Results: The main characters we found that separate the South American Austral  
clade from the Andean species studied are: indusia, spinules of ultimate segments  
and edge of rhizomes and petioles scales. In the South American Austral clade, we  
found shape and division of lamina, basal pinnae length, the number of pinnae pairs  
per lamina and the number of them with sori, and some anatomical features, such  
as glandular hairs of indusia, circumendodermal band and petiole meristemeles  
number, are informative characters at the species level.  
Conclusions: For the first time, our study recovered anatomical and morphometric  
features that consistently can be used to separate the nine Polystichum species  
inhabit southern South America.  
Citar este artículo  
MORERO, R. E., M. A. GIORGIS &  
G. E. BARBOZA. 2022. Anatomía  
comparada y análisis morfométrico  
en especies de Polystichum  
(
Dryopteridaceae) del sur de  
Sudamérica. Bol. Soc. Argent. Bot.  
57: 185-208.  
Key wordS  
Anatomy, epidermis, lamina, morphometric analyses, petiole, Polystichum, rhizome.  
reSumen  
Introducción y objetivos: Polystichum en Argentina y Chile, comprende 11 especies  
originadas de los linajes: Sudamericano Austral y Andino. La taxonomía del género  
es conflictiva debido a la frecuente hibridación, asociada a patrones de especiación  
reticulada. El presente estudio tiene como objetivos: definir caracteres morfo-  
anatómicos que contribuyan a la diferenciación de los linajes y a la delimitación de  
nueve de los taxones que comprenden.  
M&M: Se realizaron mediciones exomorfológicas y análisis de la anatomía de  
frondes y rizomas de nueve especies de Polystichum (siete del clado Austral  
Sudamericano y dos del Andino), usando microscopía óptica. En las especies  
Australes Sudamericanas se estudiaron 13 caracteres cuantitativos empleando 77  
especímenes de herbario, mediante análisis multivariados.  
Resultados: Los caracteres morfológicos que separan el clado Sudamericano  
Austral de Polystichum de las especies Andinas analizadas, son: los indusios, las  
espínulas foliares y el margen de las escamas de rizomas y pecíolos. La forma  
y división de la lámina, el número de pares de pinnas y la cantidad de ellas con  
soros, la longitud de las pinnas basales y características anatómicas como: pelos  
glandulares del indusio, banda circumendodermal y número de meristelas del  
pecíolo, son rasgos informativos a nivel específico del clado Sudamericano Austral.  
Conclusiones: Por primera vez, una combinación de atributos anatómicos,  
morfológicos y morfométricos han permitido separar de manera confiable los nueve  
Polystichum estudiados, demostrando su valor taxonómico.  
Recibido: 1 Mar 2022  
Aceptado: 26 May 2022  
Editora: Ana María Gonzalez  
PalabraS clave  
Análisis morfométrico, anatomía, epidermis, lámina, pecíolo, Polystichum, rizoma.  
ISSN versión impresa 0373-580X  
ISSN versión on-line 1851-2372  
185  
Bol. Soc. Argent. Bot. 57 (2) 2022  
introducción  
abordada parcialmente en el contexto de las floras  
de diferentes regiones y países (Tryon & Stolze,  
Polystichum Roth (Dryopteridaceae), con ca. 1991; Kessler et al., 2005; Smith et al., 2005;  
00 especies (Zhang & Barrington, 2013; PPG Condack, 2015; Morero, 2016; Rodríguez et al.,  
5
I, 2016), es uno de los géneros más grandes de 2018) y no se han encontrado trabajos anatómicos  
helechos. Se extiende preferentemente en regiones publicados hasta el momento.  
subtropicales, templadas y templado-frías de casi  
todo el planeta, siendo el sudeste de Asia (con reconocidos por sus rizomas usualmente erectos;  
70% de las especies) el área de mayor riqueza frondes monomórficas, escamosas; láminas  
Los miembros de Polystichum pueden ser  
~
específica. Sin embargo, una importante diversidad 1-4-pinnadas; pinnas y pínnulas con la base  
del género también se encuentra enAmérica Central estrecha y asimétrica, últimos segmentos con una  
y Sudamérica; en esta última, habitan alrededor de aurícula acroscópica y espínulas en los márgenes  
4
0 especies, la mayoría en ambientes montanos de desarrollo variable o ausentes; nerviación libre;  
de los Andes del Norte y Centrales (Kessler et al., soros generalmente circulares, exindusiados o  
2
2
005; McHenry & Barrington, 2014; Condack, cubiertos por un indusio redondeado y peltado  
015).  
En Argentina y Chile crecen 11 especies de  
(Barrington, 1995, 2011).  
En cuanto a los atributos anatómicos, los más  
Polystichum (Morero, 2016; Rodríguez et al., estudiados en el género han sido de carácter  
018) que pertenecen, al menos, a dos linajes con cualitativo, por ejemplo: la organización del  
2
diferencias en la morfología, número cromosómico mesofilo de la hoja y la vascularización de los  
y relaciones biogeográficas. Así, las especies que pecíolos y rizomas, teniendo en cuenta el número,  
habitan el norte y centro deArgentina están incluidas formayconfiguracióndelasmeristelas(Roux, 2004;  
en el linaje “Andino exindusiado”, grupo con Vasheka et al., 2017). Además, los tipos de estomas  
entidades en su mayoría diploides, soros desnudos y los aeróforos, comunes en Dryopteridaceae,  
y ancestros en América tropical y neotropical pueden aportar información útil para distinguir  
(McHenry & Barrington, 2014). En tanto, las siete taxones en Polystichum (Lin & DeVol, 1977,  
especies endémicas del sur de Argentina y Chile, 1978; Shah et al., 2018). En cuanto a los apéndices  
constituyen el “Clado Sudamericano Austral”. Este epidérmicos, el margen, forma y color de las  
grupo está filogenéticamente relacionado con los escamas de las frondes y rizomas resultan de gran  
Polystichum de Australia y Nueva Zelanda, con valor para distinguir las especies (Kessler et al.,  
quienesconformanel“CladoAustral”, caracterizado 2005; Barrington, 2011). Finalmente, en relación a  
por la presencia de especies poliploides y soros las estructuras reproductivas de valor diagnóstico se  
cubiertos por un indusio (Morero et al., 2019).  
destacan la morfología e indumento de los indusios  
Polystichum cuenta con estudios sobre la (Barrington, 1985; Soltis et al., 1987) y algunos  
morfología y anatomía de especies representativas aspectos palinológicos como lo es la ornamentación  
de Asia (Chandra, 1977; Khullar & Gupta, 1979; del perisporio (Zhang & He, 2010, 2011; Han  
Chandra & Nayar, 1982; Shah et al., 2018), África et al., 2016). Entre los aspectos cuantitativos se  
(
2
Roux 2000, 2001, 2004; Roux & Van Wyk, estudiaron el tamaño de las esporas, los estomas y  
000) y Norteamérica (Wagner, 1979). Un set otras células epidérmicas, relacionándolos con el  
de unos pocos caracteres morfológicos sirvió de nivel de ploidía de las especies (Morero et al., 2015;  
base para la circunscripción de secciones en Asia Vasheca et al., 2017; Shah et al., 2018, 2021).  
(
Daigobo, 1972; Fraser-Jenkins, 1997; Zhang & La taxonomía tradicional basada solamente en  
Barrington, 2013) y África (Roux, 2000, 2001, la morfología y anatomía no permite resolver, en  
004). La mayoría de las secciones propuestas muchos casos, la delimitación de las especies de  
2
para las especies de Japón, China y Sudáfrica Polystichum, debido a la escasez de sinapomorfías  
han sido recuperadas posteriormente en trabajos fenotípicas y la convergencia de caracteres  
moleculares-filogéneticos (Little & Barrington, morfológicos (Kessler et al., 2005; Barrington,  
2
003; Driscoll & Barrington, 2007; Lu et al., 2007; 2011). Asimismo, la hibridación frecuente, la  
Li et al., 2008; LePechón et al., 2016). Sin embargo, poliploidía (especialmente alopoliploidía) y la  
la morfología de las especies sudamericanas ha sido apomixis dificultan aún más la delimitación  
186  
R. E. Morero et al. - Anatomía comparada y análisis morfométrico en Polystichum  
taxonómica a nivel de especie (Barrington, 1985, se emplearon dos frondes maduras y el rizoma, se  
1
990). Los Polystichum Sudamericanos Australes enlistan a continuación los especímenes estudiados:  
no escapan a esta problemática; este grupo de Polystichum andinum Phil. ARGENTINA. Prov.  
alopoliploides exhibe una amplia variación  
morfológica que dificulta la delimitación de los  
taxones (Morero et al., 2021), tal es el caso de P.  
chilense var. dusenii (C.Chr.) R.Rodr., taxón que  
fuera reconocido por Rodríguez Ríos (1987, 1989) y  
posteriormente pasado a la sinonimia de P. chilense  
de Chubut. Dpto. Cushamen, Lago Puelo,  
nacientes del arroyo Aguja Sur, 42°10’44.25’’ S,  
71°42’30.66’’W, 1106 msnm, 30-V-2013, Morero  
380 (CORD). Prov. Río Negro. Dpto. Bariloche,  
Parque Nacional Nahuel Huapi, pasando 200 m el  
refugio del Cerro Otto, camino hacia “La Olla”,  
40°24’44.55’’ S, 71°38’30.68’’ W, 1496 msnm,  
24-I-2010, Morero 291 (CORD).  
(
H.Christ) Diels (Morero et al., 2016). Estos  
autores argumentaron que los rasgos morfológicos  
propuestos para esta variedad caen dentro del Polystichum chilense (H.Christ) Diels,  
rango de variación fenotípica de las poblaciones  
de la especie. En este aspecto, el análisis de  
datos morfométricos continuos empleando técnicas  
multivariadas de ordenación puede contribuir a  
ARGENTINA. Prov. Neuquén. Dpto. Los Lagos,  
Parque Nacional Nahuel Huapi, Cascada Santa  
Ana, 40°41’00’’S, 71°56’00’’W, 1155 msnm, 27-  
I-2010, Morero 308 (CORD).  
esclarecer la delimitación taxonómica de especies, Polystichum montevidense (Spreng.) Rosenst.  
variedades e híbridos en el género (Barrington,  
985, 2003; Mayer & Mesler, 1993). En este  
contexto, los objetivos de este trabajo fueron: (1)  
definir caracteres morfo-anatómicos que aporten  
una evidencia consistente para la delimitación  
de las siete especies de Polystichum del clado  
ARGENTINA. Prov. Córdoba. Dpto. Punilla,  
Los Gigantes, Sierras Grandes, 31º23’99’’ S,  
64º47’99’’ W, 1858 msnm, 27-III-2011, Morero  
339 (CORD). Prov. Tucumán. Dpto. Chicligasta,  
Cuesta del Clavillo, 27º16’32’’S, 65º58’27.97’’W,  
1938 msnm, 07-VII-2011, Morero 349 (CORD).  
1
Sudamericano Austral y dos del clado Andino [P. Polystichum mohrioides (d’Urv.) C.Presl,  
montevidense (Spreng.) Rosenst. y P. pycnolepis  
Kunze ex Klotzsch) Hieron.] y (2) proporcionar  
ARGENTINA. Islas Malvinas. Isla Soledad.  
Lewis & Block 1596 (VT).  
(
una revisión de los límites interespecíficos de las Polystichum multifidum (Mett.) T.Moore.  
especies de Polystichum del clado Sudamericano  
Austral basada en métodos de ordenación  
multivariados de datos morfométricos.  
ARGENTINA. Prov. Chubut. Dpto. Cushamen, El  
Hoyo, Paraje El Pedregoso, Cascada Escondida,  
42°08’44’’ S, 71°25’23’’ W, 320 msnm, 16-  
VII-2012, Morero & Vidoz 370 (CORD). Prov.  
Neuquén. Dpto. Los Lagos, Parque Nacional  
Nahuel Huapi, Cascada Santa Ana, 40°41’00’’  
S, 71°56’00’’ W, 1155 msnm, 27-I-2010, Morero  
306 (CORD).  
materialeS y métodoS  
Para la localización, reconocimiento a campo y  
recolección del material de estudio, se efectuaron Polystichum platyphyllum (Willd.) C.Presl.  
dos viajes al sur argentino (Provincias de Neuquén  
y Río Negro) y dos viajes a Chile, (Provincia  
de Osorno, X Región de Los Lagos y en la Isla  
Robinson Crusoe, Archipiélago Juan Fernández).  
ARGENTINA. Prov. Tucumán. Dpto.  
Chicligasta, Cuesta del Clavillo, 27º16’32’’  
S, 65º58’27.97’’ W, 1938 msnm, 07-VI-2011,  
Morero 352 (CORD).  
Los esporofitos fueron recolectados de poblaciones Polystichum plicatum (Poepp. ex Kunze) Hicken  
naturales y cultivados en el invernáculo de la  
Facultad de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales,  
Universidad Nacional de Córdoba (Argentina).  
Para analizar las variaciones en los caracteres  
morfométricos se seleccionaron 7-13 especímenes  
de herbario representativos de cada taxón de los  
Polystichum SudamericanosAustrales, recolectados  
a lo largo de la distribución geográfica (se detallan en  
el Anexo 1). Para el análisis de los microcaracteres  
ex Hosseus. ARGENTINA. Prov. Neuquén.  
Dpto. Bariloche, Parque Nacional Nahuel Huapi,  
Cerro López, sobre margen del camino de acceso  
vehicular, 41º05’38,55’’ S, 71º32’56,23’’W, 1213  
msnm, 24-I-2010, Morero 293 (CORD). Dpto.  
Los Lagos, Villa La Angostura, Cerro Bayo,  
en las márgenes del arroyo, 40°44’58,22’’ S,  
71°36’17,03’’ W, 1454 msnm, 28-I-2014, Morero  
387 (CORD).  
187  
Bol. Soc. Argent. Bot. 57 (2) 2022  
Polystichum pycnolepis (Kunze ex Klotzsch) Hieron. Análisis del tipo de estomas y células epidérmicas:  
ARGENTINA. Prov. Córdoba. Dpto. Punilla, la terminología utilizada se basó en la literatura  
Los Gigantes, camino al refugio del Club Andino revisada para helechos (Ogura, 1972; Van Cotthem,  
Córdoba, 31°23’48.69’’ S, 64°45’17.59’’ W, 1736 1970a, b, 1973; Lin & DeVol, 1977, 1978; Lellinger,  
msnm, 4-II-2015, Morero & C-X Li 427 (CORD). 2002). Para la tipología de los estomas, se utilizó  
Polystichum tetragonum Fée. CHILE, Archipiélago la clasificación de Van Cotthem (1970a, b, 1973).  
de Juan Fernández, Isla Robinson Crusoe, en A los fines de comparar el tamaño de los estomas  
sendero a El Mirador, 33º38'17'' S, 78º50'45'' W, y las células epidérmicas propiamente dichas de  
2
47 msnm, 01/XII/2010, Morero 323 (CORD).  
la lámina, entre los diferentes taxones, se hicieron  
5 mediciones del largo de las células en vista  
paradermal, por carácter señalado, por individuo,  
1
Caracteres anatómicos  
Preparaciones histológicas permanentes: se con la ayuda del programa ImageJ (Schneider et  
realizaron cortes transversales del rizoma, pecíolo al., 2012). Únicamente se sintetizan los valores  
(porción basal y apical) y de las pinnas medias o cuantitativos a través de la media, debido a que el  
de sus últimas divisiones. En material previamente número de muestras fue escaso y no permitió realizar  
fijado en FAA (formol, alcohol etílico 95%, ácido ningún análisis estadístico. Las fotomicrografías se  
acético glacial y agua) se aplicaron las técnicas tomaron con un microscopio Axiophot Zeiss.  
clásicas de deshidratación, inclusión en Histoplast,  
cortes microtómicos de 10 a 14 µm, doble coloración Análisis de caracteres morfométricos  
con azul de astra-fucsina básica y posterior montaje Selección de caracteres: Se usaron plantas secas,  
con bálsamo de Canadá (D’Ambrogio de Argüeso, porque los estados de los caracteres pueden presentar  
1
986; Krauss et al., 1998). Las fotomicrografías se cambios significativos cuando están frescos. Las  
realizaron con microscopio óptico Zeiss Axiophot y mediciones se realizaron sobre la fronde fértil más  
cámara Leica digital DFC300FX. grande de cada individuo. Se analizaron un total  
Preparados semipermanentes: se efectuaron cortes a de 77 individuos y se computaron o midieron 13  
mano alzada de frondes (lámina y pecíolo) y rizomas caracteres cuantitativos (10 continuos y 3 discretos),  
en material fresco. Algunos de los cortes se montaron que se detallan en la Tabla 1, Anexo 1.  
y observaron directamente sin tinción previa; el Análisis estadísticos: A fin de seleccionar las  
resto de los cortes fueron examinados después de variables morfo-anatómicas más informativas, se  
proceder a su clarificación con hipoclorito de sodio realizó un análisis de correlación entre ellas. De las  
al 30% y coloración con safranina y azul de astra. variables que tuvieron una correlación mayor al 0.7,  
Para evidenciar paredes celulares y contenidos, se seleccionaron aquellas que fueran biológicamente  
se efectuaron pruebas histoquímicas mediante más informativas y fáciles de observar (Tabla 1,  
la técnica de coloración directa, utilizando los Anexo 1). Con las primeras variables seleccionadas  
siguientes reactivos: sudán III y IV (lípidos), lugol se realizó un análisis de Componentes Principales  
(almidón), cloruro férrico (compuestos fenólicos) (ACP) a fin de conocer el ordenamiento espacial  
y fluoroglucina clorhídrica (lignina). A posteriori de los individuos analizados para cada uno de los  
se realizó el montaje en glicerina acuosa al 50% taxones estudiados. Se siguió el criterio taxonómico  
(Sandoval Zapotitla, 2005; Zarlavsky, 2014).  
de Rodríguez et al. (2018) para determinar los  
Extendidos de epidermis: para observar las células especímenes como P. chilense var. chilense y P.  
epidérmicas propiamente dichas, apéndices chilense var. dusenii. Posteriormente, para identificar  
epidérmicos (pelos y escamas), células anexas y las variables morfo-anatómicas que permiten  
estomas, se obtuvieron las epidermis de rizomas diferenciar mejor los grupos taxonómicos se efectuó  
y frondes (pecíolo, raquis y pinnas o pínnulas) un análisis discriminante canónico para variables  
por desprendimiento del material vivo o en FAA. métricas (ADL). Finalmente, se realizó una tabla de  
Posteriormente se clarificaron con hipoclorito de clasificación cruzada entre la clasificación previa y  
sodio al 30% o hidróxido de sodio al 3%, durante la clasificación resultante del análisis discriminante.  
aproximadamente 5 minutos, luego se colorearon Tanto el ACP como el ADL se implementaron con el  
con safranina y azul de astra, montándose en Software Infostat Versión profesional (Di Rienzo et  
glicerina al 50%.  
al., 2011).  
188  
R. E. Morero et al. - Anatomía comparada y análisis morfométrico en Polystichum  
Tabla 1. Caracteres morfológicos cuantitativos  
empleados en los análisis multivariados de  
Polystichum Sudamericanos Australes. En  
negrita, los caracteres seleccionados a partir del  
análisis de correlación.  
cm) y láminas más divididas (hasta 4-pinnadas)  
(Fig. 1A-I, Tabla 2). La textura de la lámina varía  
desde algo carnosa en P. andinum y P. mohrioides  
hasta membranácea en P. multifidum; en el resto de  
las especies es cartácea o papirácea. Las pinnas o  
pínnulas tienen siempre la base estrecha y asimétrica,  
siendo el lado acroscópico más desarrollado que el  
basiscópico (Fig. 1E, G, J). Los márgenes pueden estar  
provistos de espínulas, que están notablemente más  
desarrolladas en las especiesAndinas (P. montevidense  
y P. pycnolepis), en tanto, están ausentes en las especies  
Sudamericanas Australes o las presentan débiles en el  
extremo de cada segmento (Fig. 1I-K, Tabla 2). En  
P. andinum, P. mohrioides y P. plicatum, la lámina  
es estrecha (relación ancho/largo: 1/6-1/8), con el  
extremo corto y acuminado, las pinnas basales se  
disponen perpendiculares al raquis, no superando los 3  
cm long. (Fig. 1A, B, D), mientras que en las especies  
Sudamericanas Australes restantes (P. chilense, P.  
multifidum, P. subintegerrimum y P. tetragonum) y en  
las Andinas, la lámina es más ancha (relación ancho/  
largo: ½ -1/5), la porción apical es larga y pinnatífida,  
las pinnas basales son divergentes y descendentes y  
sobrepasan los 5 cm de largo en las frondes maduras  
(Fig. 1C, F, Tabla 2). Polystichum chilense es la  
única especie que ocasionalmente desarrolla bulbillos  
Variables  
1
2
3
4
Ancho de la escama base pecíolo mm  
Ancho de la lámina sector basal mm  
Ancho de la lámina sector medio mm  
Ancho pinna media mm  
Distancia entre pinnas mm (lámina sector  
medio)  
5
6
7
8
9
Longitud de la escama base del pecíolo mm  
Longitud fronde cm  
Longitud de la lámina cm  
Longitud de la pinna basal mm  
Longitud de la pinna media mm  
N° pares pinnas  
10  
11  
1
2
3
N° pares de pinnas soríferas  
N° pares de pínnulas  
1
(yemas capaces de desarrollar nuevos individuos), que  
se ubican a lo largo del raquis primario, en la base de  
cada pinna (Fig. 1H).  
reSultadoS  
El patrón de nerviación en todos los taxones  
estudiados es abierto, a partir del nervio medio se  
originan nervios secundarios 1-2-furcados. Los soros  
Caracterización morfo-anatómica  
Las frondes: Cada rizoma reúne entre 5-25 frondes. siempre se ubican asociados a las venillas. Pueden  
Las hojas se disponen desde erectas a curvadas localizarse preferentemente a lo largo de las mismas,  
(Fig. 1A-F). Polystichum mohrioides y P. andinum comoenPolystichummultifidumyP. subintegerrimum,  
presentan frondes que tienden a estar rígidamente o bien en el extremo (“soros terminales”), como ocurre  
erguidas (Fig. 1A, D), con las pinnas más apretadas y en P. chilense. Las especies restantes presentan una  
ascendentes, mientras que las frondes de las especies combinación de ambas topologías del receptáculo  
restantes, son más curvadas y laxas, con las pinnas soral. Sólo entre las especies SudamericanasAustrales,  
más separadas y horizontales (Fig. 1C, F). Según el con excepción de P. tetragonum, las pinnas soríferas  
hábitat que colonice, P. plicatum exhibe ambas formas están restringidas a un sector, que puede ser, la mitad  
de disposición de las frondes (Fig. 1B).  
o el cuarto superior de la lámina (P. andinum, P.  
Polystichum montevidense, P. plicatum, P. mohrioides yP. plicatum), o bien, hasta la 3⁄4 parte de la  
pycnolepis y P. subintegerrimum presentan frondes misma (P. chilense y P. multifidum). En P. tetragonum,  
2-pinnadas y de tamaño frecuentemente mediano generalmente, todas las pinnas son soríferas al igual  
(30-75 cm long.). P. andinum y P. mohrioides tienen que en las especies Andinas estudiadas (Tabla 2). Los  
las frondes más pequeñas (5-25 cm) y con menores soros se encuentran protegidos por un indusio en las  
divisiones (1-pinnadas a 1-pinnada-pinnatífidas) y, especies Sudamericanas Australes, que está ausente  
en contraposición, P. chilense, P. multifidum y P. en las especies Andinas. Los indusios difieren en el  
tetragonum presentan frondes más largas (30-120 margen (inciso, lacerado, lobulado, ondulado) y en  
189  
Bol. Soc. Argent. Bot. 57 (2) 2022  
Fig. 1. Hábito y morfología de las frondes. A: Polystichum mohrioides. B: P. plicatum. C: P. tetragonum.  
D: P. andinum. E: P. subintegerrimum. F, K: P. montevidense. G, H, J: P. chilense. I: P. multifidum. A-F:  
plantas en su hábitat. G: sector del haz de la lámina 2-3-pinnada. H: bulbillos en el raquis primario. I: sector  
adaxial de la lámina 3-4-pinnada. J: cara abaxial con soros indusiados. K: lámina, sector abaxial con soros  
exindusiados. Escalas= A-F: 10 cm; G-K: 1 cm.  
190  
R. E. Morero et al. - Anatomía comparada y análisis morfométrico en Polystichum  
191  
Bol. Soc. Argent. Bot. 57 (2) 2022  
192  
R. E. Morero et al. - Anatomía comparada y análisis morfométrico en Polystichum  
la presencia de pelos glandulares, como los de P. de fibras esclerenquimáticas (Fig.2F. J). El mesofilo  
andinum, P. mohrioides y P. tetragonum (Fig. 2A, es heterogéneo, mostrando diferenciación entre  
Tabla 2).  
el parénquima en empalizada y el parénquima  
En todas las especies, el indumento de la lámina esponjoso con células braciformes; el primero  
comprende pelos y microescamas, y en los raquis consta de 1-4 capas de células cuadrangulares  
y pecíolos, pelos y escamas (Fig. 2B, C, Tabla 2). a rectangulares, relativamente ordenadas y con  
Salvo en Polystichum andinum, P. plicatum y P. escasos espacios intercelulares entre ellas; hacia la  
subintegerrimum, fueron observados pelos glandulares cara abaxial, el parénquima esponjoso se caracteriza  
sobre las escamas y microescamas de diferentes por células redondeadas con proyecciones que  
órganos (Fig. 2D).  
delimitan lagunas (Fig. 2K); sólo en Polystichum  
La organización de los tejidos de la lámina es similar tetragonum el mesófilo es homogéneo, si bien las  
en todas las especies. Las células epidérmicas del células clorenquimáticas disminuyen levemente  
hipofilo (en vista superficial) son 3-4 veces más largas en tamaño desde la cara adaxial hacia la cara  
que anchas, con paredes radiales sinuosas; salvo los abaxial, presentan formas regulares (cuadrangulares  
márgenes foliares, donde las células son isodiamétricas a redondeadas) y escasos espacios intercelulares en  
y menos sinuosas. El epifilo presenta células alargadas todo el mesofilo.  
(con relación largo/ancho 5-7:1), las paredes radiales  
El pecíolo es cilíndrico, surcado dorsalmente,  
tienen sinuosidades irregulares; en contraste, las verde a verde amarronado, con la base más oscura y  
células de los márgenes foliares y las ubicadas a lo escamosa. El diámetro y la longitud de los pecíolos  
largo de los nervios son alargadas y de paredes rectas varían notablemente entre las especies, siendo los  
o levemente curvadas y carecen de estomas. La lámina menores de 1-2 mm de diám. y 2-5 cm de long.  
es hipostomática y la distribución de los estomas es (Polystichum andinum), en tanto, los mayores  
homogénea en todo el hipofilo; los estomas son del tipo pueden alcanzar ca. 20 mm de diám. y 70 cm de  
anomocítico, polocítico y estaurocítico, predominando long. (en P. chilense y P. multifidum). En relación a  
los dos últimos tipos (Fig. 2E, G-I, Tabla 2).  
la long. de la fronde, los pecíolos proporcionalmente  
Todas las especies exhiben, en corte transversal, más largos (1/2 long. de la fronde) se presentan en  
la epidermis (superior e inferior) unistrata, cubierta P. andinum, P. mohrioides, P. subintegerrimum y P.  
exteriormente por una cutícula lisa y delgada, las tetragonum, en tanto, los más cortos (ca. 1/5 de la  
células epidérmicas son rectangulares o más o menos long. de la fronde) se observan en P. chilense y P.  
isodiamétricas, de paredes delgadas y se observan plicatum (Tabla 2).  
los estomas al mismo nivel que el resto de las células  
En vista superficial del pecíolo las células  
epidérmicas, en todas las especies (Fig. 2E, F). En epidérmicas son alargadas y los estomas siempre  
las láminas coriáceas de Polystichum plicatum, P. están restringidos a dos aeróforos laterales. En cada  
pycnolepis, P. subintegerrimum y P. tetragonum ambas aeróforo, los estomas funcionales se disponen en  
epidermis presentan células con paredes más gruesas y varias (2-5) series paralelas flanqueando el pecíolo  
lignificadas. Tanto en la epidermis superior como en la (Fig. 3A, B); en algunas especies (p. ej. P. plicatum),  
inferior, se observaron pelos glandulares unicelulares y las células oclusivas del estoma se deforman y el  
más raramente bicelulares.  
poro colapsa, especialmente en los pecíolos de hojas  
En corte transversal, el hacecillo vascular maduras (Fig. 3B).  
principal y los secundarios, se sitúan equidistantes  
En transcorte del pecíolo, se observó una  
entre la epidermis adaxial y la abaxial. En los cutícula delgada y lisa y, subyacente, la epidermis  
hacecillos vasculares, el xilema está compuesto uniestratificada formada por células isodiamétricas,  
por traqueidas helicoidales y escalariformes. Los con paredes igualmente engrosadas y lignificadas.  
hacecillos son concéntricos y están rodeados por La corteza se inicia en un tejido hipodérmico  
una endodermis y una vaina parenquimática. La mecánico que constituye el estereoma (Fig. 3C). El  
última, está constituida por 1-2 capas de tejido estereoma consiste en fibras esclerenquimáticas de  
parenquimático en los nervios secundarios o, varias paredes engrosadas y lignificadas, organizadas en  
capas más, a nivel de la costa, donde generalmente varias capas, de 5-6 en la base de los pecíolos más  
se extienden de la epidermis abaxial a la adaxial, delgados (Polystichum andinum y P. mohrioides) y  
pudiendo ser reemplazadas a este nivel por grupos alrededor de 15 (hasta 18), en la base de los pecíolos  
193  
Bol. Soc. Argent. Bot. 57 (2) 2022  
Fig. 2. Lámina de las frondes. A: Polystichum mohrioides. B, C: P. andinum. D: P. montevidense. E: P.  
multifidum. F, J: P. subintegerrimum. G: P. plicatum. H: P. montevidense. I, K: P. chilense. A: pelo glandular  
unicelular del pecíolo. B: escama del raquis. C: microescama del hipofilo. D: pelo glandular bicelular en  
la superficie de la escama rizomática. E: corte transversal de una pínnula. F: corte transversal de una  
pínnula a nivel del hacecillo medio. G: estoma anomocítico y estoma polocítico. H: estoma estaurocítico.  
I: estoma polocítico. J: detalle del hacecillo vascular medio del corte mostrado en F. K: detalle de células  
parenquimáticas. Abreviaturas= anom: estoma anomocítico; *: endodermis; est: estoma estaurocítico; pol:  
estoma polocítico; st: estoma; vp: vaina parenquimática. Escalas= A, D, G-K: 50 µm; E, F: 100 µm; B, C: 1  
194  
R. E. Morero et al. - Anatomía comparada y análisis morfométrico en Polystichum  
del hacecillo vascular y el periciclo (Fig. 3G,  
Tabla 3. Autovectores (e y e ) resultantes del  
1
2
H). El hacecillo es anfifloico, de manera que el  
xilema está completamente rodeado de floema. A  
su vez, el floema y el xilema son exarcos, pues la  
diferenciación de estos tejidos es centrípeta y procede  
hacia el interior de la meristela, localizándose el  
protoxilema, principalmente, en el extremo delgado  
y el metaxilema en la base de la región ensanchada;  
en el caso del floema, el metafloema se halla en  
contacto con el xilema. El periciclo, está constituido  
por 1-3 estratos de células parenquimáticas de  
paredes delgadas y de mayor tamaño que las células  
endodérmicas y floemáticas que lo rodean (Fig.  
análisis de componentes principales, mostrando  
los coeficientes con que cada variable original  
fue ponderada para conformar el componente  
principal 1 y el componente principal 2. Análisis  
generado con 6 variables morfométricas  
computadas en 77 especímenes de Polystichum  
Sudamericanos Australes. Las variables se  
disponen en orden decreciente de acuerdo a los  
valores del coeficiente e1.  
Autovectores  
Variables  
e1  
e2  
Longitud de la fronde  
0.47  
-0.10  
3H, K). Por fuera de cada meristela se encuentra  
la endodermis, formada por uno o dos estratos de  
células especializadas. Las células endodérmicas,  
son más pequeñas que las circundantes y muestran  
una forma rectangular, tangencialmente alargada,  
con las paredes de grosor uniforme (Fig. 3H, I, K). En  
ellas, la banda de Caspary no sólo está restringida a  
las paredes radiales, sino que la suberización también  
se extiende a las tangenciales (interna y externa). La  
tinción con Sudán IV fue positiva para suberina en la  
banda de Caspary (Fig. 3I). El número de meristelas  
Longitud de las pinnas basales  
0.45  
0.44  
0.04  
Ancho de la escama del pecíolo  
-0.32  
Longitud de la escama del pecíolo  
N° de pares de pinnas  
0.43  
0.33  
0.30  
-0.40  
0.35  
0.78  
N° de pares de pinnas soríferas  
(generalmente 2-8) y la forma del xilema en corte  
transversal, presentan variantes según la especie  
de mayor grosor, donde las paredes celulares suelen (Tabla 2). Así, en la base del pecíolo, P. andinum y P.  
pigmentarse de castaño oscuro por la presencia de mohrioides exhiben el menor número de meristelas,  
compuestos fenólicos (P. montevidense, P. multifidum dos y tres, respectivamente (Fig. 3E). En el primero,  
y P. tetragonum, Tabla 2). A nivel de los aeróforos, el el xilema de cada hacecillo tiene forma deltoide  
estereoma siempre se interrumpe y es reemplazado (Fig. 3E), en tanto en el segundo, las dos meristelas  
por parénquima con espacios intercelulares amplios, dorsales tienen el xilema en forma de kitasato y es  
facilitando así el intercambio gaseoso con el medio elíptico, en la meristela más pequeña opuesta a las  
(
Fig. 3D). En contacto con las capas internas del anteriores. En el resto de las especies se distinguieron  
estereoma, se encuentra tejido parenquimático (Fig. de 4-8 meristelas siendo la forma del xilema en las  
C, D). Los cloroplastos están presentes por lo meristelas dorsales y ventrales similar al patrón de P.  
3
menos en las capas más superficiales, pero pueden mohrioides (Fig. 3F). El número de meristelas varía a  
hallarse más internamente llegando hasta la médula lo largo del pecíolo y ejes foliares debido a la fusión  
(
p. ej. P. multifidum).  
El parénquima medular siempre está presente algunos casos, sólo una o las dos meristelas mayores,  
y consta de células isodiamétricas, con paredes en el extremo de los raquis de mayor orden.  
delgadas y abundantes granos de almidón. El tipo Asimismo, las especies estudiadas presentan  
entre sí de las meristelas menores, quedando en  
de estela del pecíolo es una dictiostela (Fig. 3E, banda circumendodermal (analizada en este trabajo a  
F), denominado “Aspidium”, propuesto por Ogura nivel de la base del pecíolo), excepto en Polystichum  
(
1972) para Polystichum y otros géneros afines. chilense y P. multifidum donde está ausente. Esta  
En este modelo, las dos meristelas más grandes se estructura está representada por 1-3 capas de  
localizan en la posición dorsal, a ambos lados del células parenquimáticas con paredes engrosadas  
surco medio del pecíolo y, hacia la cara abaxial, que rodean exteriormente la endodermis (Fig. 3J-  
las meristelas menores se disponen en forma de M). Los engrosamientos se ubican en las paredes  
“U” abierta (Fig. 3F). Cada meristela se compone radiales y tangencial interna, adoptando la forma  
195  
Bol. Soc. Argent. Bot. 57 (2) 2022  
Fig. 3. Pecíolo y raquis. A, D: Polystichum subintegerrimum. B, F: P. plicatum. C: P. chilense. E, I:  
P. andinum. G, H: Polystichum multifidum. J: P. mohrioides. K: Polystichum montevidense. L, M: P.  
tetragonum. A: aeróforo en vista superficial del raquis. B: aeróforo en vista superficial del pecíolo, con  
estomas no funcionales. C: corte transversal del pecíolo (sector apical). D: estoma en transcorte de  
pecíolo (véase el estereoma interrumpido y reemplazado por parénquima). E: estela del pecíolo con  
dos meristelas. F: dictiostela del pecíolo. G: meristela con el cordón xilemático en forma de kitasato. H:  
sector de la meristela mostrada en G. I: meristela, tinción Sudan IV. J: banda circumendodermal continua  
(tinción cloruro férrico). K: detalle de la banda circumendodermal continua con engrosamientos en U. L:  
Meristela mayor con banda circumendodermal discontinua. M: Meristela menor. Abreviaturas= bc: banda  
circumendodernal; *: endodermis; es: estereoma; et: estoma; fl: floema; mf: metafloema; mx: metaxilema;  
pc: parénquima cortical; pe: periciclo; pf: protofloema; px: protoxilema. Escalas= A-D, H, I, K: 50 µm; E, F:  
500 µm; G, J, L, M: 250 µm.  
196  
R. E. Morero et al. - Anatomía comparada y análisis morfométrico en Polystichum  
de “U” en transcorte, y se hallan pigmentados y disminuyendo en diámetro a medida que se  
de color castaño a negruzco, siendo positiva en ramifican en los raquis de mayor orden; los  
las pruebas histoquímicas para los compuestos aeróforos se prolongan desde el pecíolo y se  
fenólicos (Fig. 3J, K). Los engrosamientos pueden extienden en los laterales de los raquis, pueden  
llegar a ocupar el lumen completo de las células, verse a simple vista, más oscuros o más claros  
como es el caso de P. tetragonum, único taxón con que el tejido circundante. El número de meristelas  
banda circumendodermal discontinua y desigual disminuye progresivamente a lo largo de estos ejes  
(Fig. 3L, M). En P. chilense y P. multifidum se foliares, pudiendo quedar sólo una de las dorsales  
detectaron engrosamientos en las células que rodean más grandes, en los raquis de mayor orden.  
la endodermis, pero no contienen compuestos El rizoma: en P. andinum es decumbente, en las  
fenólicos, sustancias características de la banda especies restantes es erecto (Fig. 4A, Tabla 2). P.  
circumendodermal (Fig. 3G, H).  
andinum y P. mohrioides exhiben los rizomas más  
En cuanto a los apéndices epidérmicos se delgados (0,2-0,5 cm de diámetro), en el resto de las  
observaron, en todas las especies, pelos y escamas. especies el diámetro oscila entre 1- 4,5 cm (Tabla  
Los pelos son notablemente uniformes, del tipo 2). En P. chilense, P. multifidum y P. tetragonum,  
glandular 1-celular con el extremo globoso (pelos los individuos más viejos forman como un pequeño  
glandulares clavados) y también pelos 2-celulares tronco con las bases de los pecíolos persistentes,  
(cabezuela 1-celular, pie 1-celular), estos últimos llegando el conjunto a medir hasta 35 cm de altura  
se encontraron mayoritariamente en Polystichum y 10-15 cm de diámetro. La organización anatómica  
andinum. Las escamas varían en coloración, margen, del rizoma en todas las especies es similar;  
forma y tamaño en las distintas especies (Tabla 2). carecen de cutícula, la epidermis es unistrata y las  
En relación a la forma, las escamas de la base de los capas subepidérmicas constituyen el estereoma.  
pecíolos son, generalmente, ovadas o anchamente Los estomas están ausentes o son evidentes en  
lanceoladas, con los márgenes enteros o con algunos rizomas jóvenes de P. plicatum y P. montevidense,  
dientes o cilios basales en las especies Australes constituyendo dos aeróforos a ambos lados del  
Sudamericanas y con numerosos dientes o cilios órgano, que se continúan en los laterales de pecíolos  
largos, en las especies Andinas analizadas. Todas y raquis. La zona más interna de la corteza junto  
las especies presentan una combinación de escamas a la médula, están conformadas por varias capas  
bicoloras y concoloras (Tabla 2).  
concéntricas de tejido parenquimático de relleno y  
La coloración y el aspecto de los raquis en de reserva (Fig. 4B). En la médula parenquimática  
las especies analizadas no difieren de la porción se presentan las meristelas, generalmente de 2-8.  
apical del pecíolo en donde se originan, siendo En ambas zonas, pero sólo en las especies con  
generalmente verdes, surcados dorsalmente rizomas erectos (P. chilense, P. montevidense,  
Fig. 4. Rizoma. A: Polystichum plicatum. B: P. andinum. C, D: P. montevidense. A: Rizoma de tipo erecto en  
corte longitudinal. B: Rizoma en transcorte. C, D: médula del rizoma. C: transcorte de una zona con células  
esclerificadas. D: vista lateral de las células en proceso de esclerificación y pigmentación. Abreviaturas=  
es: estereoma; me: meristela; pt: puntuación; tf: traza foliar. Escala= A: 1 cm; B= 500 µm; C, D: 100 µm.  
197  
Bol. Soc. Argent. Bot. 57 (2) 2022  
P. multifidum, P. plicatum y P. tetragonum), son la variabilidad de los caracteres morfométricos  
frecuentes pequeñas manchas oscuras (de 1-4 mm analizados, mientras que el componente principal  
de diámetro). Éstas corresponden a grupos de 2 solo explicó el 15%. La longitud de las pinnas  
células esclerenquimáticas, con paredes secundarias basales, la longitud de la fronde, y la longitud  
engrosadas, atravesadas por puntuaciones y y ancho de las escamas peciolares fueron las  
pigmentadas de color pardo-anaranjado o pardo- principales variables que se asociaron positivamente  
rojizo oscuro, hasta negro (Fig. 4C, D). La prueba con el eje 1, en tanto el número de pinnas soríferas  
histoquímica con cloruro férrico reveló que se trata fue la variable relacionada positivamente con el  
de un compuesto fenólico. El pigmento responsable eje 2 (Fig. 5A, Tabla 3). A lo largo del primer  
fue reportado como “flobafene”, una sustancia componente se observa un gradiente continuo de  
formada por oxidación y condensación a partir las especies analizadas (Fig. 5A). En el extremo  
de compuestos fenólicos, capaz de retener agua negativo de este eje se encuentran Polystichum  
(Ogura, 1972; Derzhavina, 2020). Estas estructuras andinum seguido, por P. mohrioides, taxones que  
también fueron observadas en la médula de los poseen las frondes, las pinnas basales y las escamas  
pecíolos de las especies antes mencionadas. La peciolares más pequeñas, mientras que con estados  
estela corresponde a una dictiostela. El diámetro de de caracteres opuestos y en el extremo positivo del  
las meristelas es de 1-2 mm y el número varía de primer componente 1, se localizan P. multifidum y  
2
4
-3 en Polystichum andinum y P. mohrioides y de P. tetragonum. A lo largo del componente principal  
-8 en el resto de las especies, sin contar las trazas o 2 no se identifica una separación de los taxones  
rastros menores que divergen a los pecíolos y raíces analizados (Fig. 5A). Sin embargo, la mayoría  
Fig. 4B). de los individuos de P. andinum y P. mohrioides  
Los apéndices epidérmicos, en todas las especies tienden a ubicarse en el extremo positivo del  
examinadas, son las escamas, las que generalmente mismo, por presentar escamas peciolares pequeñas.  
se solapan e imbrican, cubriendo casi totalmente el En el análisis discriminante, el eje canónico 1  
(
área superficial del rizoma. La densidad y los tipos explicó el 68,19 % de la variación mientras que el  
de escamas presentes varían según las especies en eje 2 sólo absorbió el 22,74 %, totalizando entre  
coloración, forma, margen y tamaño (Tabla 2).  
ambos el 90,93% (Fig. 5B). La discriminación  
de las especies en el eje 1 estuvo principalmente  
Límites interespecíficos del clado Sudamericano relacionada de forma positiva a la longitud de  
Austral de Polystichum las pinnas basales y negativamente al número de  
El componente principal 1 explicó el 65% de pares de pinnas; el eje 2, por su parte, se asoció  
Fig. 5. Biplots. Basados en 6 variables morfométricas de 77 especímenes pertenecientes a 8 taxones de  
Polystichum Sudamericanos Australes (según el criterio taxonómico de Rodríguez et al., 2018). A: Biplot  
resultante del análisis de componentes principales. B: Biplot resultante del análisis discriminante.  
198  
R. E. Morero et al. - Anatomía comparada y análisis morfométrico en Polystichum  
Con valores intermedios en el eje 1, se encuentran  
P. chilense var. chilense, P. chilense var. dusenii y P.  
Tabla 4. Correlación entre las variables  
morfométricas y los dos ejes del análisis  
subintegerrimum (Fig. 5B), indicando que tienen las  
frondes con número de pares de pinnas intermedios  
entre P. andinum, P. mohrioides y P. plicatum, por  
un lado, y P. multifidum y P. tetragonum, por el  
otro. Además, de estos tres taxones con frondes  
intermedias, P. subintegerrimum, tiende a separarse  
de los restantes con valores más bajos en el eje 2,  
indicando que los individuos de esta especie tienen  
una menor cantidad de pinnas y, a la vez, menor  
número de pinnas fértiles que los de P. chilense var.  
chilense y P. chilense var. dusenii.  
discriminante realizado para las especies de  
Polystichum del clado Sudamericano Austral.  
Autovectores  
Variables  
e1  
e2  
Longitud pinnas basales  
Ancho escama del pecíolo  
Longitud escama del pecíolo  
Longitud fronde  
0,77  
-0,31  
0,3  
0,48  
-0,01  
0,45  
1,12  
-1,27  
0,42  
-0,04  
-0,72  
0,54  
N° pares de pinnas  
N° pares de pinnas soríferas  
La tabla de clasificación cruzada mostró que  
los individuos pre-clasificados de Polystichum  
andinum, P. plicatum, P. subintegerrimum y P.  
tetragonum fueron asignados correctamente a sus  
mayoritariamente al número de pares de pinnas y respectivas especies (tasa de error del 0 %, Tabla 5),  
al número de pares de pinnas soríferas, de forma por lo que estos taxones pueden diferenciarse con  
positiva y negativa, respectivamente (Tabla 4). A las variables utilizadas. Sin embargo, se obtuvo una  
lo largo del eje 1, en el extremo negativo se sitúan tasa de error del 22,2% al diferenciar los individuos  
Polystichum andinum, P. mohrioides y P. plicatum, de P. mohrioides y del 30,8%, al discriminar  
por ser los taxones cuyas frondes presentan menor los especímenes de P. chilense var. dusenii de  
número de pares de pinnas y las pinnas basales la variedad tipo. En el caso de P. multifidum, el  
más pequeñas. En el extremo positivo del eje 1 se porcentaje de error (9%) es sensiblemente menor  
encuentran P. multifidum y P. tetragonum quienes que en los anteriores y las variables podrían ser de  
tienen la longitud de las pinnas basales más grandes todos modos útiles para discriminar los individuos  
y la mayor cantidad de pares de pinnas (Fig. 5B). de esta especie.  
Tabla 5. Tabla de clasificación cruzada (tasa de error aparente). Se observan en las filas los individuos  
previamente asignados a cada especie de Polystichum Sudamericanos Australes, según el criterio  
taxonómico de Rodríguez Ríos et al. (2018) y en las columnas los mismos individuos y las especies a las  
que se asignan al usar la función discriminante.  
Error  
Taxón  
P. andinum  
Pa  
Pcvc  
Pcvd  
Pm  
Pmu  
Pp  
Ps  
Pt  
Total  
(%)  
10  
10  
9
0
P. chilense var. chilense  
P. chilense var. dusenii  
P. mohrioides  
7
4
1
9
1
22,22  
30,77  
22,22  
9,09  
0
13  
9
2
7
P. multifidum  
10  
1
11  
9
P. plicatum  
9
P. subintegerrimum  
P. tetragonum  
7
7
0
9
9
0
Total  
12  
11  
10  
7
10  
10  
7
10  
77  
11,69  
Referencias. Pa: Polystichum andinum, Pcvc: P. chilense var. chilense, Pcvd: P. chilense var. dusenii, Pm:  
P. mohrioides, Pmu: P. multifidum, Pp: P. plicatum, Ps: P. subintegerrimum y Pt: P. tetragonum.  
199  
Bol. Soc. Argent. Bot. 57 (2) 2022  
Clave para diferenciar los taxones de Polystichum  
1
. Soros con indusio; láminas fértiles con los soros ocupando ¼ a ¾ de la parte superior o toda la lámina;  
margen de los últimos segmentos entero o con algunas espínulas poco desarrolladas (< 1mm long);  
escamas del pecíolo y raquis con margen entero o dentado en la base  
2
1
'. Soros sin indusio; láminas fértiles con los soros ocupando toda la lámina; margen de los últimos  
segmentos con espínulas muy desarrolladas (>3mm long); escamas del pecíolo y raquis con margen  
provisto de cilios largos y ramificados  
8
2
. Láminas lanceoladas o anchamente elípticas, 2-4 veces más largas que anchas, ápice largamente  
pinnatífido; último par de pinnas basales mayores de 5 cm long., divergentes y descendentes; últimos  
segmentos con espínulas (<1mm) en el margen o sólo en el ápice; soros ocupando más de la mitad  
superior o toda la lámina  
3
2
'. Láminas lineares o angostamente elípticas, 5-8 veces más largas que anchas, ápice entero, corto,  
acuminado; último par de pinnas basales menores de 3 cm long., perpendiculares al raquis; últimos  
segmentos sin espínulas en el margen; soros en el cuarto o mitad superior de la lámina  
6
3. Láminas con 18-25 pares de pinnas, distanciadas en el raquis, las pinnas medias y basales hasta con  
8(12) pares de pínnulas; base del pecíolo con 4-5 meristelas, estereoma con 4-8 capas de esclerénquima  
P. subintegerrimum  
3
'. Láminas con 22-38 pares de pinnas contiguas en el raquis, las medias con más de 12 pares de  
pínnulas; base del pecíolo con 6-8 meristelas, estereoma con 12-18 capas de esclerénquima  
4
4
4
. Frondes de 50-80 cm long. Escamas peciolares basales de 1-1,5 cm long., pinna media 7-10 x  
,50-2,5 cm  
1
P. chilense  
'. Frondes de 40-150 cm long. Escamas peciolares basales de 1,8-2,5 cm long., pinna media 7-20 x  
1,60-4 cm  
5
5
. Láminas con mesofilo heterogéneo; últimos segmentos espatulados, margen sin espínulas;  
soros en ¾ parte superior de la lámina; meristelas de la base del pecíolo sin banda  
circumendodermal  
P. multifidum  
5
'. Láminas con mesofilo relativamente homogéneo; últimos segmentos romboidales, margen  
con una espínula poco desarrollada (< 1mm long) en el ápice; soros en toda la lámina;  
meristelas de la base del pecíolo con banda circumendodermal  
P. tetragonum  
6
. Frondes medianas, de (20) 30-70 (80) cm long.; láminas 2-pinnadas, porción apical  
acuminada; pecíolo con 4-6 meristelas en la base; pinnas con ápice acuminado, las basales  
reducidas a menos de la mitad de las pinnas medias; raquis con escasas escamas lineares,  
amarillo pajizo; base del pecíolo con escamas de 10-20 mm long., bicolores, centro  
atropurpúreo y margen castaño-anaranjado; indusio sin pelos glandulares  
P. plicatum  
6'. Frondes pequeñas, de (5) 8-20 (35) cm long.; láminas 1-pinnadas a 1-pinnada- pinnatisectas,  
porción apical obtusa; pecíolo con 2-3 meristelas en la base; pinnas con ápice redondeado,  
200  
R. E. Morero et al. - Anatomía comparada y análisis morfométrico en Polystichum  
las basales iguales en longitud a las pinnas medias; raquis con abundantes escamas  
lanceoladas, castaño-anaranjadas; base del pecíolo con escamas menores de 10 mm long.,  
concoloras o algo oscurecidas en el centro; indusio con pelos glandulares  
7
7
. Pinnas medias de 4-12 mm long., ovado-deltoides, margen crenado o pinnatífido,  
indusio con pelos glandulares en el margen  
P. andinum  
7
'. Pinnas medias de 10-20 mm long.; triangular-deltoides, pinnatisectas hacia la base;  
indusio con pelos glandulares en toda la superficie  
P. mohrioides  
8
. Frondes rígidas; pinnas coriáceas, ascendentes; margen de los últimos segmentos  
revoluto; escamas del pecíolo cobrizas a castaño-rojizo oscuro  
P. pycnolepis  
8
'. Frondes laxas; pinnas cartáceas, horizontales o levemente ascendentes en los  
extremos; margen de los últimos segmentos plano; escamas del pecíolo castaño-oscuro  
y bicoloras, centro oscuro y bordes anaranjado pálido  
P. montevidense  
diScuSión  
presentan indusio y carecen de espínulas o, si están  
presentes, son débiles y se restringen al extremo de  
Variabilidad y valor taxonómico de los caracteres la aurícula y de la pinna. En tanto, en los congéneres  
morfológicos y anatómicos Andinos analizados los indusios están ausentes  
Los caracteres morfológicos informativos de la y presentan las espínulas muy desarrolladas en  
lámina que han permitido distinguir claramente dos todo el margen. Estos caracteres, que no están  
grupos en los Polystichum SudamericanosAustrales influenciados por el hábitat o edad de la planta,  
son: forma de la lámina y porción apical, presencia/ también se han empleado en la taxonomía de las  
ausencia de espínulas débiles y disposición y especies de Polystichum de los Andes (McHenry &  
longitud de pinnas basales. Así, P. multifidum, Barrington, 2014).  
P. chilense y P. tetragonum conforman un grupo  
La división de la lámina es uno de los caracteres  
homogéneo que se distingue por las láminas morfológicos de la fronde taxonómicamente más  
anchamente elípticas, el extremo pinnatífido, los informativo a nivel de especie. Los Polystichum del  
segmentos con espínulas débiles en el margen clado Sudamericano Austral, presentan láminas 1-4  
y las pinnas basales descendentes, mayores de pinnadas y los andinos examinados, 2-pinnadas. Si  
5
cm de long.; por otra parte, P. andinum, P. bien, la división de la lámina puede incrementarse  
plicatum y P. mohrioides comparten las láminas con la edad de la planta (Barrington, 2011), siendo  
lineares y el extremo acuminado, las pinnas basales las plantas más juveniles menos divididas que  
perpendiculares al raquis, menores de 5 cm de las maduras, las comparaciones realizadas en  
long. y los segmentos sin espínulas en el margen. individuos adultos muestran que la división de la  
Ambos grupos de especies corresponden a linajes lámina es un carácter bastante conservado y no está  
recuperados en análisis filogenéticos recientes, afectado por el hábitat.  
con excepción de P. andinum, que divergió  
tempranamente en el Clado de los Polystichum especies de Polystichum sigue el patrón básico  
Sudamericanos Australes (Morero et al., 2019). reportado para otras especies del género (Chandra,  
Por otro lado, la epidermis de la lámina en las  
Asimismo, la presencia/ausencia de indusios, las 1977; Mehra & Sony, 1983; Shah et al., 2018),  
espínulas del margen foliar y su grado de desarrollo, con células epidérmicas alargadas y paralelas a las  
permiten diferenciar las especies Sudamericanas venas, usualmente de mayor tamaño en la epidermis  
Australes de las Andinas, pues las primeras adaxial. Los estomas se ubican exclusivamente en  
201  
Bol. Soc. Argent. Bot. 57 (2) 2022  
la cara inferior de la lámina (lámina hipostomática) por lo cual resultaría un carácter informativo. En  
y a nivel de la epidermis o algo elevados, en los los escasos estudios anatómicos de Polystichum,  
aeróforos, como es característico en Polystichum la presencia de pelos ha sido reportada como un  
(Kondo, 1962; Zhang, 1996; Shah et al., 2018). carácter raro y observado en los indusios y en  
Estomas anomociticos, polocíticos, copolocíticos plantas jóvenes y de escaso valor taxonómico  
y estaurocíticos han sido reportados para otras (Chandra & Nayar, 1982; Roux & Van Wyk,  
especies del género (Kondo, 1962; Van Cotthen, 2000). Sin embargo, en este trabajo, los pelos se  
1
1
970a, b, 1973; Chandra, 1977; Mehra & Soni, han hallado en los ejemplares adultos de todas  
983; Zhang, 1996; Roux & Van Wyk, 2000; las especies y ampliamente distribuidos en los  
Shah et al., 2018). En las especies examinadas, órganos (pecíolos, ejes foliares, lámina e indusios);  
predominan losestomaspolocíticosyestaurocíticos, resultaron especialmente útiles para diferenciar  
seguidos por los anomocíticos; el tipo de estoma a P. mohrioides, P. andinum y P. tetragonum, los  
es un carácter polimórfico, observándose hasta únicos taxones que presentan pelos glandulares  
tres tipos diferentes y adyacentes en la misma en los indusios, el primero en toda la superficie y,  
fronde. En P. andinum, es común la presencia de los últimos, sólo en el margen. Además, resulta  
estomas contiguos compartiendo las mismas células interesante destacar que la presencia de estos pelos  
acompañantes. El tamaño de las células oclusivas glandulares en otros géneros de Dryopteridáceas,  
es muy variable entre las especies. Se ha observado fundamentalmente en Dryopteris, Arachnoides y  
que la especie diploide P. montevidense presenta Elaphoglossum, está asociada a la producción de  
células oclusivas pequeñas (en vista superficial), acilfloroglucinoles, compuestos polifenólicos que  
con longitudes de 64,91-85,02 µm, mientras que tienen propiedades antihelmínticas (Socolsky et al.,  
en los tetraploides (P. andinum, P. chilense, P. 2012).  
mohrioides, P. multifidum y P. plicatum) el rango  
Un carácter taxonómico informativo importante  
observado es 99,8-234,97 µm y en el octoploide en Polystichum son las escamas (Barrington, 2011).  
P. subintegerrimum el rango es de 109,46-189,26 Se las encuentra cubriendo densamente la superficie  
µm. El tamaño de los estomas (usualmente el largo del rizoma y la base del pecíolo o, regularmente  
de las células guardianas) ha sido correlacionado esparcidas, en los raquis y en la cara abaxial de la  
positivamente con el nivel de ploidía en Asplenium lámina, donde están generalmente asociadas a los  
(Moran, 1982; Akhter et al., 2018), Dryopteris nervios; en este último caso, por ser más pequeñas (2-  
(Schneller, 1974; Roux, 2012) y Polystichum 15 mm long.), suelen denominarlas microescamas.  
(Barrington et al., 1986; Roux & Van Wyk, 2000). Resulta interesante señalar que el margen de las  
Sin embargo, sería necesario contar con extendidos escamas en las especies del clado Sudamericano  
de epidermis de más ejemplares por especie para Austral es liso o presenta pequeños dientes; en  
confirmar los resultados obtenidos en este trabajo. tanto, las especies andinas, P. montevidense y P.  
El análisis del tejido epidérmico ha permitido pycnolepis, además de dientes marginales, presentan  
corroborar la información existente para el género, cilios largos. En cuanto a la estructura, en todas  
no obstante, los datos obtenidos tienen relativa las especies, se observó el entramado celular del  
significancia taxonómica en el grupo de especies de tipo “conforme” pues las células del margen se  
Polystichum estudiado.  
orientan del mismo modo que las del área media,  
El indumento en las especies de Polystichum en series paralelas al eje mayor de la escama.  
analizadas comprende pelos y escamas. En todos Según la distribución del color, las hay concoloras  
los taxones se observaron pelos glandulares o bicoloras, y la tonalidad cambia del castaño  
unicelulares y también 2-celulares. Los primeros son anaranjado y amarillento (escamas rizomáticas  
los más frecuentes y han sido denominados “pelos de P. andinum) hasta el marrón oscuro casi negro  
unicelulares clavados o glándulas unicelulares lustroso (escamas del rizoma de P. plicatum). La  
clavadas” en trabajos anatómicos de otras especies forma de las escamas varía desde lineares (escamas  
de Polystichum y en Dryopteris (Roux, 1997; Roux rizomáticas de P. plicatum) hasta anchamente  
&
Van Wyk, 2000; Roux, 2012). Si bien es escasa elípticas y ovado lanceoladas (escamas rizomáticas  
la diversidad de tipos de pelos, la distribución en de P. andinum). También pueden encontrarse pelos  
la superficie de la planta, difiere entre las especies, glandulares asociados al borde de la escama (P.  
202  
R. E. Morero et al. - Anatomía comparada y análisis morfométrico en Polystichum  
andinum y P. pycnolepis), o bien sobre la superficie destacar el trabajo de Pittermann et al. (2015).  
(P. chilense, P. mohrioides y P. tetragonum), o en Según estos autores, los patrones de vascularización  
ambos (P. montevidense). Generalmente las escamas con varios hacecillos de conducción, como las  
se insertan en la epidermis mediante un corto dictiostelas, están presentes en los linajes de helechos  
pedicelo.  
más derivados como es el caso de Dryopteridaceae  
La lámina de las especies examinadas (excepto (Schneider et al., 2004; Schuettpelz & Pryer, 2009;  
Polystichum tetragonum) presenta el mesofilo Liu et al., 2014), sugiriendo que la estructura del  
heterogéneo, con diferenciación en parénquima xilema (especialmente el aumento del número  
clorofiliano en empalizada y clorofiliano braciforme, de cordones xilemáticos) estuvo bajo una fuerte  
similar a lo informado para otras especies del género presión de selección para resistir la sequía, durante  
(Ogura, 1972). La presencia de parénquima con la diversificación de los helechos Eupoliploides en el  
células braciformes también ha sido reportado Cenozoico. Según Lin & DeVol (1977) el tipo más  
en géneros de Pteridaceae (Graçano et al., 2001). frecuente de configuración del cordón del xilema en  
El espesor del mesofilo puede variar ligeramente las dictiostelas es el “hipocampo”, término acuñado  
entre las especies, así P. mohrioides exhibe el por Ogura (1972) en alusión a la forma típica del  
mayor grosor (~460,73 µm), especialmente porque xilema con los dos extremos curvados (semejante  
presenta mayor número de capas de parénquima a un caballito de mar) en transcorte; otros autores  
en empalizada y, P. multifidum caracterizado por su (Hernández et al., 2006; Pitterman et al., 2015)  
lámina membranácea, es el que posee el mesofilo han aplicado el mismo término para Dryopteris  
más delgado (~133,13 µm).  
y Polystichum, pero en estos géneros el xilema  
La variación en los patrones de la estela de los adopta una forma diferente, con un solo extremo  
pecíolos es un carácter taxonómico importante en delgado y curvo y el opuesto ancho y recto, por ello  
Polystichum (Lin & DeVol, 1977, 1978; Hernández- es denominado en este trabajo forma de “kitasato”  
Hernández et al., 2012; Pittermann et al., 2015). (Fig. 3G). En todas las especies estudiadas, el  
La estructura estelar de los rizomas y ejes foliares xilema de las dos meristelas mayores presenta la  
en las especies de Polystichum estudiadas, es configuración en “kitasato”, con excepción de P.  
una dictiostela, patrón ya mencionado para todos andinum, que tiene el xilema en forma deltoide en  
los géneros de Dryopteridáceas (Ogura, 1972; sus dos únicas meristelas.  
Pittermann et al., 2015). En los taxones examinados,  
Todas las especies analizadas de Polystichum  
se reconocieron de 2 a 7 (raramente ocho) meristelas presentan un estereoma hipodermal en los pecíolos.  
en transcortes de la base del pecíolo. Datos previos El estereoma está ampliamente difundido entre los  
para otros miembros del género fueron similares helechos. Según Mahley et al. (2018), la presencia  
al rango obtenido para las especies estudiadas, se del estereoma, específicamente su posición periférica  
reportaron hasta nueve hacecillos en P. biaristatum y dentro del pecíolo y la elasticidad del esclerénquima,  
escasamente dos en P. obliquum (Khullar & Gupta, permite el desarrollo de pecíolos más fuertes y  
1979). El número de meristelas en la base del pecíolo, resistentes a las tensiones de tracción y compresión.  
permite distinguir a P. andinum y P. mohroides En concordancia con los autores mencionados,  
del resto de las especies, pues se observan dos observamos que el espesor absoluto (en números de  
hacecillos en el primero y tres en el segundo; en las capas) del estereoma, varía proporcionalmente con  
restantes especies la cantidad varía entre 4-8, siendo el diámetro del pecíolo y el tamaño de la hoja, por lo  
P. multifidum y P. chilense los taxones con el mayor que es un atributo útil para discriminar las especies  
número de hacecillos (6-8). Cabe destacar que se o grupos de especies de Polystichum.  
pudo determinar una correlación positiva entre el  
Otro atributo vascular polimórfico de  
número de meristelas de la dictiostela y el tamaño importancia taxonómica y filogenética es la banda  
de las plantas, correspondiendo a las especies con circumendodermal en la zona basal del pecíolo.  
individuos más grandes, las estelas con hacecillos Se halla presente en todas las especies estudiadas,  
más numerosos, probablemente por necesitar éstos salvo en los especímenes analizados de Polystichum  
últimos un mayor aprovisionamiento y distribución chilense y P. multifidum. Por lo tanto, este carácter  
de nutrientes. Asimismo, en relación a la evolución no permitiría diferenciar a los Polystichum del grupo  
de las dictiostelas en helechos, resulta interesante Sudamericano Austral de las especies Andinas;  
203  
Bol. Soc. Argent. Bot. 57 (2) 2022  
sin embargo, resultó especialmente útil para Caracteres morfométricos en la delimitación de las  
distinguir a P. tetragonum pues es el único taxón especies de Polystichum del clado Sudamericano  
con una banda circumendodermal discontinua y con Austral  
engrosamientos que ocluyen el lumen celular. La  
La longitud de las pinnas basales, el número de  
función de la banda circumendodermal aún no se pares de pinnas de la lámina y la cantidad de ellas  
conoce con claridad (Hernández-Hernández et al., con soros, fueron los caracteres más importantes  
2012) y podría atribuírsele una función protectora que permitieron diferenciar los taxones del clado  
pues la presencia de compuestos fenólicos serviría Sudamericano Austral. En líneas generales, se  
de barrera contra patógenos; además, proporcionaría pueden diferenciar tres grandes grupos; por un  
una mayor rigidez y resistencia mecánica a las lado, Polystichum andinum, P. mohrioides y P.  
frondes. La exclusiva presencia de esta banda en la plicatum con pinnas basales menores, que oscilan  
mayoría de las familias más derivadas de helechos entre 5-20 mm de largo, en el extremo opuesto, P.  
soporta la hipótesis de un origen evolutivo único de tetragonum y P. multifidum cuyas pinnas alcanzan  
la banda circumendodermal, correlacionado con la un rango de 65-140 mm; entre ambos, con fenotipos  
evolución de las dictiostelas (Hernández-Hernández intermedios, se encuentra el tercer grupo integrado  
et al., 2012).  
por: P. chilense var. chilense, P. chilense var.  
Estudios morfo-anatómicos de Polystichum dusenii y P. subintegerrimum. Dentro del primer  
Chandra & Nayar, 1982; Mayer & Mesler, 1993; grupo es posible la separación de P. plicatum pues  
(
Roux & Van Wyk, 2000) y la información aportada mostró el mayor número de pares de pinnas (20-  
por diversas floras y trabajos florísticos (Barrington, 33) y el menor número de pinnas fértiles (8-17);  
1995; Roux, 2000, 2001, 2004; Brownsey & Smith- valores considerablemente menores para el número  
Dodsworth, 2000; Barrington, 2011; Zhang & de pares de pinnas exhiben en conjunto P. andinum  
Barrington, 2013), muestran que la mayoría de las y P. mohrioides (10-23 pares de pinnas). Asimismo,  
especies presentan dos tipos básicos de rizomas: en el segundo grupo, la combinación de mayor  
erectos y decumbentes. El tipo erecto es corto y número de pares de pinnas, menos pinnas soríferas  
generalmente no ramificado con un largo número y escamas del pecíolo más anchas distingue a  
de frondes originadas en la región apical, mientras P. multifidum de P. tetragonum. Finalmente,  
que el tipo decumbente es usualmente largo y P. subintegerrimum y ambas variedades de P.  
ramificado, naciendo las hojas a lo largo del mismo. chilense, taxones muy similares a campo, pueden  
Ambas formas están presentes en las especies de diferenciarse por presentar el primero, menor  
Polystichum estudiadas, siendo la primera de ellas la cantidad de pinnas y, a la vez, menor número de  
más frecuente. Sin embargo, en P. tetragonum y P. pinnas fértiles.  
plicatum, los rizomas de las plantas grandes suelen  
Es importante destacar que en el caso de  
inclinarse lateralmente (rizomas ascendentes). Sólo Polystichum chilense, los especímenes de la  
en una especie del clado Sudamericano Austral, P. variedad típica y los de la var. dusenii muestran  
andinum, los rizomas son decumbentes, naciendo solapamiento en ambos ejes canónicos y una  
apretadamente varias plantas a lo largo de él. elevada tasa de error de clasificación, sugiriendo  
Según Roux y Van Wyk (2000), las especies con que no es posible diferenciarlos entre sí, con base en  
este tipo de rizoma a menudo se encuentran en los caracteres morfométricos analizados. Tampoco  
hábitats más expuestos creciendo en densos clones, se han encontrado diferencias sustanciales al  
como es precisamente el caso de P. andinum, que comparar caracteres cualitativos, tanto anatómicos  
habita gregariamente en los intersticios rocosos como exomorfológicos. Históricamente, la var.  
de ambientes de alta montaña. En contraste con dusenii ha causado confusión en su circunscripción  
el tipo de rizoma decumbente, el rizoma erecto e identificación (Christensen, 1910; Looser, 1968;  
del resto de las especies analizadas, se presenta Rodríguez Ríos, 1987, 1989); consecuentemente,  
generalmente en individuos que viven aislados y teniendo en cuenta el conjunto de evidencias  
raramente forman agrupamientos densos. En cuanto morfológicas y citológicas (ambas variedades son  
a los caracteres anatómicos del rizoma, se observó tetraploides), se refuerza lo propuesto por Morero  
que son histológicamente muy similares en todas las et al. (2016) al considerar la var. dusenii como un  
especies estudiadas.  
sinónimo de P. chilense.  
204  
R. E. Morero et al. - Anatomía comparada y análisis morfométrico en Polystichum  
Las evidencias morfológicas sugieren que no hay BARRINGTON, D. S. 1985. The morphology and origin  
un único carácter que permita separar los taxones  
estudiados, más bien es necesario una combinación  
of a new Polystichum hybrid from Costa Rica. Syst.  
Bot. 10: 199–204. https://doi.org/10.2307/2418346  
de varios caracteres para su correcta identificación. BARRINGTON, D. S. 1990. Hybridization and  
Esta conclusión resulta consistente con la extrema  
labilidad morfológica que presentan las especies  
Polystichum (Barrington, 2011).  
allopolyploidy in Central American Polystichum:  
Cytological and isozyme documentation. Ann. Mo.  
Bot. Gard. 77: 297-305.  
https://doi.org/10.2307/2399544  
BARRINGTON, D. S. 1995. Polystichum. In: MORAN,  
R. C. & R. RIBA. (eds. Pteridofitas), Flora  
Mesoamericana, vol. 1, pp. 218-225. Universidad  
Nacional Autónoma de México, México. Missouri  
Botanical Garden & The Natural History Museum,  
London, U.K.  
contribución de loS autoreS  
REM y MAG recolectaron los especímenes a  
campo, REM identificó los especímenes, efectuó  
las mediciones de los ejemplares, realizó y analizó  
los preparados, tomó las fotomicrografías, y BARRINGTON, D. S. 2003. Polystichum lilianae sp.  
confeccionó las láminas. MG realizó el análisis  
estadístico de los datos. REM redactó el manuscrito  
con la participación de MG y GEB.  
nov. (Dryopteridaceae) and its relationships to P.  
fournieri and P. turrialbae. Brittonia 55: 317-325.  
https://www.jstor.org/stable/3218371  
BARRINGTON, D. S. 2011. The fern genus Polystichum  
(Dryoperidaceae) in Costa Rica. Ann. Mo. Bot. Gard.  
agradecimientoS  
98: 431–446. https://doi.org/10.3417/2011051  
BARRINGTON, D. S., C. A. PARÍS & T. A. RANKER.  
1986. Systematic inferences from spore and stomata  
size in the ferns. Am. Fern J. 76: 149–159.  
Las autoras agradecen al Herbario del Museo  
Botánico (CORD), especialmente a P. Hick, J. Ponce  
y P. Wiemer por su asistencia permanente durante  
el desarrollo de este trabajo. Asimismo, hacemos  
extensivo nuestro reconocimiento a los curadores de los  
herbarios BA, BCRU, CONC, LIL, LP, MCNS, SGO,  
https://doi.org/10.2307/1547723  
BROWNSEY, P. J. & J. C. SMITH-DODSWORTH.  
2000. New Zealand ferns and allied plants. David  
Bateman Ltd., Auckland, New Zealand.  
SI y VT por facilitarnos sus colecciones de Polystichum CHANDRA, P. 1977. Epidermal studies in some species  
para los estudios morfométricos. Agradecemos  
of Polystichum Roth. New Botanist 4: 101–107.  
también a la Biól. Adriana Pérez por su constante CHANDRA, P. & B. K. NAYAR. 1982. Morphology  
colaboración en el laboratorio y al guardaparque  
Félix Vidoz (Parque Nacional Lago Puelo, provincia  
de Chubut) por proveer fotografías y material de  
of some polystichoid fems. II. The sporophyte of  
Arachniodes, Cyrtomium and Polystichum. J. Indian  
Bot. Soc. 61: 391–403.  
varias especies. Asimismo, hacemos extensivo nuestro CHRISTENSEN, C. 1910. On some species of ferns  
agradecimiento a la Editora y los revisores anónimos  
por los valiosos comentarios y sugerencias que  
collected by Dr. Carl Skottsberg in temperate South  
America. Ark. Bot. 10: 1–32.  
permitieron mejorar sustancialmente este trabajo. Este CONDACK, J. P. S. 2015. Polystichum. In Lista de  
estudio fue financiado por la Secretaría de Ciencia  
y Tecnología, Universidad Nacional de Córdoba  
(SeCyT-UNC, Res. 203/14, 2014-2015).  
DAIGOBO, S. 1972. Taxonomical studies on the fern  
genus Polystichum in Japan, Ryukyu, and Taiwan.  
Sci. Rep. Tokyo Bunrika Daigaku. sect. B. 15: 57–80.  
D’AMBROGIO DE ARGÜESO, A. 1986. Manual de  
técnicas en histología vegetal. Hemisferio Sur. S.A.  
Buenos Aires.  
bibliografía  
AKHTER, A., M. I. S. SAGGOO & I. A. NAWCHOO.  
2
(
018. Meiosis and distribution pattern of cytotypes  
2x, 4x) of Maidenhair Spleenwort: Asplenium  
trichomanes L. from Kashmir, India. Cytologia 83:  
69-374. https://doi.org/10.1508/cytologia.83.369  
DERZHAVINA, N. M. 2020. Ecological morphology of  
proto-epiphyte fern Lemmaphyllum microphyllum C.  
3
205  
Bol. Soc. Argent. Bot. 57 (2) 2022  
Presl and its relation to the adaptogenesis. Contemp.  
Probl. Ecol. 13: 205-213.  
https://doi.org/10.1134/S1995425520030051  
DI RIENZO, J. A., F. CASANOVES, M. G.  
BALZARINI, L. GONZÁLEZ, M. TABLADA  
Astra blue and basic fuchsin double staining of plant  
materials. Biotech. & Histochem. 73: 235-243.  
LELLINGER, D. B. 2002. A modern multilingual  
glossary of taxonomic Pteridology. Pteridologia 2:  
1–263.  
&
C. W. ROBLEDO. 2011. Software InfoStat  
LE PÉCHON, T., H. HE, L. ZHANG, X.-M. ZHOU, X.-  
F. GAO & L.-B. ZHANG. 2016. Using a multilocus  
phylogeny to test morphology-based classifications  
of Polystichum (Dryopteridaceae), one of the largest  
fern genera. BMC Evol. Biol.16: 55.  
versión 2011. Grupo InfoStat, Facultad de Ciencias  
Agropecuarias, Universidad Nacional de Córdoba,  
Argentina. http://www.infostat.com.ar  
DRISCOLL, H. E. & D. S. BARRINGTON. 2007.  
Origin of Hawaiian Polystichum (Dryopteridaceae)  
in the context of a world phylogeny. Am. J. Bot. 94:  
https://doi.org/10.1186/s12862-016-0626-z  
LI, C.-X., S.-G. LU & D. S. BARRINGTON. 2008.  
PhylogenyofChinesePolystichum(Dryopteridaceae)  
based on chloroplast DNA sequence data (trnL-F  
anb rps4-trnS). J. Plant Res. 121: 19–26.  
1
413–1424. https://doi.org/10.3732/ajb.94.8.1413  
FRASER-JENKINS, C. R. 1997. Himalayan Ferns (A  
Guide to Polystichum). International Booksellers,  
Dehra Dun, India.  
https://doi.org/10.1007/s10265-007-0120-1  
GRAÇANO, D., A. ALVES-AZEVEDO & J. PRADO.  
LIN, B.-L. & C. E. DEVOL. 1977. The use of stipe  
characters in fern taxonomy I. Taiwania 22: 91–99.  
LIN, B.-L. & C. E. DEVOL. 1978. The use of stipe  
characters in fem taxonomy II. Taiwania 23: 77–95.  
LITTLE, D. P. & D. S. BARRINGTON. 2003. Major  
evolutionary events in the origin and diversification  
of the fern genus Polystichum (Dryopteridaceae).  
Am. J. Bot. 90: 508–514.  
2
001. Anatomia foliar das espécies de Pteridaceae  
do Parque Estadual do Rio Doce (PERD) MG. Rev.  
Bras. Bot. 24: 333–347.  
https://doi.org/10.1590/s0102-33061997000200031  
HAN, M.-Q., Y. LIU & L.-B. ZHANG. 2016. Seven new  
species of Polystichum (subg. Haplopolystichum;  
Dryopteridaceae) from southern China. Phytotaxa 280:  
2
01-221. https://doi.org/10.11646/phytotaxa.280.3.1  
HERNÁNDEZ, V., T. TERRAZAS & G. ANGELES.  
006. Anatomía de seis especies de helechos del  
http://dx.doi.org/10.3732/ajb.90.3.508  
LIU, H.-M., L.-J. HE & H. SCHNEIDER. 2014.  
Towards the natural classification of Tectarioid  
ferns: confirming the phylogenetic relationships of  
Pleocnemia and Pteridrys (Eupolypods I). J. Syst.  
Evol. 52: 161–174. https://doi.org/10.1111/jse.12073  
LOOSER, G. 1968. Los helechos del género Polystichum  
Roth en Chile. Notas preliminares. An. Mus. Hist.  
Nat. Valpso. 1: 49-58.  
LU, J.-M., D. S. BARRINGTON & D.-Z. LI. 2007.  
Molecular phylogeny of the Polystichoid ferns in  
Asia based on rbcL sequences. Syst. Bot. 32: 26–34.  
https://doi.org/10.1600/036364407780360193  
MAHLEY, J.N., J. PITTERMANN, N. ROWE, A.  
BAER, J. E. WATKINS, E. SCHUETTPELZ, J. K.  
WHEELER, K. MEHLTRETER, M. WINDHAM, W.  
TESTO & J. BECK. 2018. Geometry, allometry and  
biomechanics of fern leaf petioles: their significance  
for the evolution of functional and ecological diversity  
within the Pteridaceae. Front. Plant Sci. 9: 197.  
https://doi.org/10.3389/fpls.2018.00197  
2
género Dryopteris (Dryopteridaceae) de México.  
Rev. Biol. Trop. 54: 1157-1169.  
https://doi.org/10.15517/rbt.v54i4.3093  
HERNÁNDEZ-HERNÁNDEZ, V., T. TERRAZAS, K.  
MEHLTRETER & G. ANGELES. 2012. Studies of  
petiolar anatomy in ferns: structural diversity and  
systematic significance of the circumendodermal  
band. Bot. J. Linn. Soc. 169: 596–610.  
https://doi.org/10.1111/j.1095-8339.2012.01236.x  
KESSLER, M., A. R. SMITH & M. SUNDUE. 2005.  
Notes on the genus Polystichum (Dryopteridaceae) in  
Bolivia, with descriptions of ten new species. Brittonia  
5
0
7: 205–227. http://dx.doi.org/10.1663/0007-196X(2  
05)057%5B0205:NOTGPD%5D2.0.CO;2  
KHULLAR, S. P. & S. C. GUPTA. 1979. Morphological  
studies of some Himalayan Polystichums. Nova  
Hedwig. Beih. 63: 41–58.  
KONDO, T. 1962. A contribution to the study of fern  
stomata (II) with special reference to their structure  
and development. Res. Bull. Faculty of Education of  
Shizuoka University 13: 239–261.  
MAYER, M. S. & M. R. MESLER. 1993. Morphometric  
evidence of hybrid swarms in mixed populations  
of Polystichum munitum and P. imbricans  
(Dryopteridaceae). Syst. Bot. 18: 248-260. http://  
www.jstor.org/stable/2419401  
KRAUS, J. E., H. C. DE SOUSA, M. H. REZENDE,  
N. M. CASTRO, C. VECCHI & R. LUQUE, 1998.  
206  
R. E. Morero et al. - Anatomía comparada y análisis morfométrico en Polystichum  
MCHENRY, M. A. & D. S. BARRINGTON. 2014.  
Phylogeny and biogeography of exindusiate Andean  
Polystichum (Dryopteridaceae). Am. J. Bot. 101:  
PPG, I. 2016. A community-derived classification for  
extant lycophytes and ferns. J. Syst. Evol. 54: 563–  
603. https://doi.org/10.1111/jse.12229  
3
65–375. https://doi.org/10.3732/ajb.1300191  
RODRÍGUEZ RÍOS, R. 1987. Notas taxonómicas sobre el  
género Polystichum Roth (Aspidiaceae-Filicidae) en  
Chile. Gayana Bot. 44: 45–53.  
RODRÍGUEZ RÍOS, R. 1989. Phytogeographical and  
taxonomical comments on Chilean Pteridophyta.  
Gayana Bot. 46: 199–208.  
RODRÍGUEZ, R., C. MARTICORENA, D.ALARCÓN, C.  
BAEZA, L. CAVIERES, V. L. FINOT, N. FUENTES,  
A. KIESSLING, M. MIHOC, A. PAUCHARD, E.  
RUIZ, P. SANCHEZ & A. MARTICORENA. 2018.  
Catálogo de las plantas vasculares de Chile. Gayana  
Bot. 75: 1-430.  
http://dx.doi.org/10.4067/S0717-66432018000100001  
ROUX, J. P. 1997. A new species of Polystichum  
(Pteridophyta: Dryopteridaceae) from SouthAfric. Bot.  
J. Linn. Soc. 125: 35-43.  
MEHRA, P. N. & S. L. SONI. 1983. Stomatal patterns  
in Pteridophytes-An evolutionary approach. Proc.  
Indian Natl. Sci. Acad., B 49: 155–203.  
MORAN, R. C. 1982. The Asplenium trichomanes  
complex in the United States and adjacent Canada.  
Am. Fern J. 72: 5-11. https://doi.org/10.2307/1547078  
MORERO, R. E. 2016. Polystichum. In: ZULOAGA, F.  
O. & M. J. BELGRANO (eds.), Flora vascular de  
la República Argentina, vol. 2, Licofitas, Helechos y  
Gymnospermae. pp. 156-165. Instituto de Botánica  
Darwinion, CONICET, San Isidro, Buenos Aires.  
MORERO, R. E., F. CHIARINI, G. E. BARBOZA, J.  
URDAMPILLETA & D. S. BARRINGTON. 2015.  
Cytological study of Polystichum (Dryopteridaceae)  
species from southern South America. Aust. J. Bot.  
6
3: 403–414. https://doi.org/10.1071/bt14287  
ROUX, J. P. 2000.The genus Polystichum(Dryopteridaceae)  
in Africa. Bull. Nat. Hist. Mus., Bot. ser. 30: 33–79.  
ROUX, J. P. 2001. A review of the fern genus Polystichum  
(Pteropsida: Dryopteridaceae) in Madagascar and the  
Mascarene Region. Adansonia 23: 265-287.  
ROUX, J. P. 2004. The fern genus Polystichum (Pteropsida:  
Dryopteridaceae) in Macaronesia. Syst. Biodivers. 2:  
147-161.  
http://dx.doi.org/10.1017/S147720000400146X  
ROUX, J. P. 2012. A revision of the fern genus Dryopteris  
(Dryopteridaceae) in sub-Saharan Africa. Phytotaxa,  
70: 1-118. https://doi.org/10.11646/phytotaxa.70.1.1  
ROUX, J. P. & A. E. VAN WYK. 2000. Morphology and  
anatomy of the rhizome and frond in the African  
species of Polystichum (Pteropsida: Dryopteridaceae).  
Bothalia 30: 57–68.  
MORERO, R. E., R. DEANNA, G. E. BARBOZA & D.  
S. BARRINGTON. 2019. Historical biogeography  
of the fern genus Polystichum (Dryopteridaceae)  
in Austral South America. Mol. Phylogenet.  
Evol. 137: 168-189. https://doi.org/10.1016/j.  
ympev.2019.05.004  
MORERO, R. E., D. S. BARRINGTON, M.  
A. MCHENRY, J. P. S CONDACK & G. E.  
BARBOZA. 2016. Typifications and synonymy  
in Polystichum (Dryopteridaceae) from Chile and  
Argentina. PhytoKeys 65: 91–105.  
https://doi.org/10.3897/phytokeys.65.8620  
MORERO, R. E., M. A. GIORGIS & G. E. BARBOZA.  
2
021.IAPTChromosomedata35/01.In:MARHOLD  
K. & J. KUCERA (eds.). IAPT Chromosome Data  
5. Taxon 70: 1402-1411.  
3
http://dx.doi.org/10.4102/abc.v30i1.542  
https://doi.org/10.1002/tax.12638  
SANDOVAL ZAPOTITLA, E. 2005. Técnicas aplicadas  
al estudio de la anatomía vegetal. Cuadernos 38.  
Instituto de Biología Universidad Nacional Autónoma  
de México. UNAM, México D.F.  
SCHNEIDER, C. A., W. S. RASBAND & K. W. ELICEIRI.  
2012. NIH Image to ImageJ: 25 years of image  
analysis. Nature, Meth. 9: 671–675.  
OGURA, Y. 1972. Comparative anatomy of vegetative  
organs of the Pteridophytes. In: LINSBAUER, K.,  
G. TISCHLER &A. PASCHER (eds.), Encyclopedia  
of Plant Anatomy, vol. 7, pp. 1-502. Gebrüder  
Borntraeger, Berlín.  
PITTERMANN, J., J. E. WATKINS, K. L. CARY,  
E. SCHUETTPELZ, C. BRODERSEN, A. R.  
SMITH & A. BAER. 2015. The structure and  
function of xylem in seed free vascular plants: an  
evolutionary perspective. In: HACKE, U. (ed.),  
Functional and Ecological Xylem Anatomy, 1–37  
pp. Springer, Cham.  
https://doi.org/10.1038/nmeth.2089  
SCHNEIDER, H., E. SCHUETTPELZ, K. M. PRYER, R.  
CRANFILL, S. MAGALLON & R. LUPIA. 2004.  
Ferns diversified in the shadow of angiosperms. Nature  
428: 553–557. http://dx.doi.org/10.1038/nature02361  
SCHNELLER, J. J. 1974. Untersuchungen an  
einheimischen Farnen, insbesondere der Dryopteris  
https://doi.org/10.1007/978-3-319-15783-2_1  
207  
Bol. Soc. Argent. Bot. 57 (2) 2022  
filix-mas-Gruppe1. Teil. Ber. Schweiz. Bot. Ges. 84:  
VAN COTTHEM, W. R. J. 1970a. Comparative  
morphological study of the fem stomata in the  
Filicopsida. Bull. Jard. Bot. Nat. Belg. 40: 81–239.  
VAN COTTHEM, W. R. J. 1970b. A classification of  
stomatal types. Bot. J. Linn. Soc. 63: 235-246.  
VAN COTTHEM, W. R. J. 1973. Stomatal types and  
systematics. In: CRABBE, J. A. & B. A. THOMAS  
(eds.). The phylogeny and classification of the ferns,  
pp. 59-71. Academic, Nueva York, 1973.  
VASHEKA, O., G. PUGLIELLI, M. F. CRESCENTE, L.  
VARONE & L. GRATANI. 2017. Anatomical and  
morphological leaf traits of three evergreen ferns  
(Polystichum setiferum, Polypodium interjectum and  
Asplenium scolopendrium). Am. Fern J. 106: 258-  
268. https://doi.org/10.1640/0002-8444-106.4.258  
WAGNER, D. H. 1979. Systematics of Polystichum  
in western North America and north of Mexico.  
Pteridología 1: 1–64.  
1
95–217.  
SCHUETTPELZ, E. & K. M. PRYER. 2009. Evidence  
for a Cenozoic radiation of ferns in an angiosperm  
dominated canopy. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A.  
PNAS 106: 11200–11205.  
https://doi.org/10.1073/pnas.0811136106  
SHAH, S. N., M. AHMAD, M. ZAFAR, F. HADI, M.  
N. KHAN, A. NOOR, K. MALIK, N. RASHID,  
A. KAMAL, M. IQBAL & M. HUSSAIN.  
2
021. Application of spore morphology to solve  
identification problems in certain species of family  
Dryopteridaceae from Malakand Division, Pakistan.  
Microsc. Res. Tech. 84:1897-1910.  
https://doi.org/10.1002/jemt.23746  
SHAH, S. N., M. AHMAD, M. ZAFAR, K. MALIK, N.  
RASHID, F. ULLAH, W. ZAMAN & M. ALI. 2018.  
A light and scanning electron microscopic diagnosis  
of leaf epidermal morphology and its systematic  
implications in Dryopteridaceae: Investigating 12  
Pakistani taxa. Micron. 111: 36-49.  
ZARLAVSKY, G. E. 2014. Histología Vegetal. Técnicas  
simples y complejas. Sociedad Argentina de Botánica.  
Buenos Aires.  
https://doi.org/10.1016/j.micron.2018.05.008  
SMITH, A. R., B. LEÓN, H. TUOMISTO, H. VAN  
DER WERFF, R. C. MORAN, M. LEHNERT & M.  
KESSLER. 2005. New records of pteridophytes  
for the flora of Peru. SIDA, Contrib. Bot. 21:  
ZHANG, L. B. 1996. Study on foliar epidermis of  
Chinese sect. Metapolystichum Tagawa and sect.  
Neopolystichum Ching (Polystichum Roth). Chin. J.  
Appl. Environ. Biol. 2: 361–368.  
ZHANG, L. B. & D. S. BARRINGTON. 2013. Polystichum.  
WU, Z.-Y., P. H. RAVEN & D.-Y. HONG (eds.),  
Flora of China, vol. 2–3, pp. 629–713. Science Press &  
Missouri Botanical Garden Press, Beijing.  
2
321-2342.  
https://www.jstor.org/stable/41968530  
SOCOLSKY, C., M. A. HERNÁNDEZ & A. BARDÓN.  
2
012. Fern acylphloroglucinols: structure, location,  
and biological effects studies. In:ATTA-UR-Rahman  
ed.), Natural products chemistry, vol.5, pp. 105-  
57. Elsevier, Amsterdam.  
ZHANG, L. B. & H. HE. 2010. Polystichum speluncicola  
sp. nov. (sect. Haplopolystichum, Dryopteridaceae)  
based on morphological, palynological, and  
molecular evidence with reference to the non-  
monophyly of Cyrtogonellum. Syst. Bot. 35: 13-19.  
https://doi.org/10.1600/036364410790ff862605  
ZHANG, L. B. & H. HE. 2011. Polystichum  
fengshanense, sp. nov. (sect. Haplopolystichum,  
Dryopteridaceae) from karst caves in Guangxi,  
China based on morphological, palynological, and  
molecular evidence. Syst. Bot. 36: 854-861.  
(
1
SOLTIS, P. S., D. E. SOLTIS & E. R. ALVERSON. 1987.  
Electrophoretic and morphological confirmation  
of interspecific hybridization between Polystichum  
kruckebergii and P. munitum. Am. Fern J. 77: 42-49.  
http://dx.doi.org/10.2307/1547439  
TRYON, R. M. & R. G. STOLZE. 1991. Pteridophyta of  
Peru. Part. IV. 17. Dryopteridaceae. Fieldiana, Bot.,  
n.s. 27: 1–176.  
https://doi.org/10.1600/036364411x60487  
208